Organizacja walki z grzybicą skóry

przez | 2020-03-04

Spis treści:

Pozbawić dzieci

Grzybica skóry jest dużą grupą chorób skóry wywołanych przez grzyby chorobotwórcze (grzyby). Zakażenie występuje na trzy sposoby: od chorego lub zwierzęcia (koty, myszy itp.)., A także poprzez rzeczy (czapki, grzebienie, pościel itp.). Jednym z najczęstszych wariantów takiej choroby jest porost.

Porosty są kilku rodzajów: opryszczka pospolita (opryszczka), łupież pstry różnokolorowy lub wielokolorowy i grzybica.

Prosty porost bąbelkowy spowodowane przez wirusa, który infekuje skórę i błony śluzowe. Wirus pasożytuje na skórze wielu ludzi, ale przez długi czas choroba może nie być. Gdy tylko ciało osłabnie, aktywowana jest żywotna aktywność wirusa, dziecko jest chore. Ułatwia to hipotermia, przepracowanie, brak witamin.

Czynnik sprawczy grzybicy łupieżu versicolor. Osłabione dzieci cierpiące na choroby przewlekłe, a także wegetonerwicę ze zwiększonym poceniem się całej skóry, częściej chorują. Zakażenie następuje w wyniku kontaktu z chorym, użycia tych samych przedmiotów.

Grzybica wywoływana jest przez dwa grzyby, jeden z nich jest pasożytniczy u kotów, drugi u ludzi. Zakażenie następuje poprzez bezpośredni kontakt zdrowych dzieci z chorymi zwierzętami lub ludźmi, a także przez zakażone przedmioty.

Przebieg pozbawiania dzieci

Proste pęcherze porostowe rozwijają się na dowolnej części skóry ciała, ale najczęściej wpływają na usta, błonę śluzową jamy ustnej, skrzydła nosa, rogówkę i wargi sromowe. Choroba zaczyna się w postaci wysypki (na opuchniętej zaczerwienionej skórze pojawiają się pęcherzyki grupowe, które się nie łączą. Wysypka pęcherzyków poprzedza swędzenie, pogorszenie ogólnego stanu, dreszcze, niestrawność, zaburzenia apetytu, sen.

Po 2-3 dniach pęcherzyki stają się mętne i zamieniają się w wrzody. Wysychają później, tworząc surowo-ropną skórkę. Po opadnięciu skórki na jej miejscu pozostają niestabilne zmiany skórne..

Choroba łupież zaczyna się 2-3 tygodnie po kontakcie, a następnie na skórze szyi i górnej części ciała pojawiają się małe kropkowane żółtawo-brązowe plamy. Ich kolor może być inny: od jasnoróżowego do brązowo-brązowego. Powierzchnia plam jest nieco szorstka z powodu tworzenia się łusek otrębowych..

Grzybica charakteryzuje się uszkodzeniem głównie skóry głowy i gładkiej skóry.. Następnie na powierzchni dotkniętych obszarów wszystkie włosy są odłamane na poziomie 5 mm, miejsca te są w zastałym kolorze czerwonym, mają wiele szarawo-białych łusek. W niektórych przypadkach tworzą się ropne skorupy. Przy uszkodzeniu gładkiej skóry widoczny jest okrągły przekrwienie ograniczające ją, które znajduje się w otwartych obszarach ciała.

Leczenie porostów u dzieci

Jeśli wystąpią objawy porostu, dziecko zostaje odizolowane od zespołu dziecięcego i wysłane do dermatologa. Leczenie miejscowe Zastosuj różne maści zgodnie z zaleceniami lekarza. Dziecko z prostym porostem może uczęszczać do instytucji za zgodą lekarza. Spotkania na leczenie wykonuje starsza pielęgniarka. W przypadku łupieżu i grzybicy dzieci nie mogą uczęszczać do przedszkola.

Zapobieganie i organizacja walki z grzybicą skóry, porostów

Walka z grzybicą skóry obejmuje wczesne rozpoznanie choroby poprzez obowiązkowe badanie laboratoryjne grzybów, terminową izolację pacjentów i ich racjonalne leczenie, identyfikację źródeł infekcji, zapobieganie ich dalszemu rozprzestrzenianiu się i dezynfekcję wykrytego ogniska.

Duże znaczenie ma badanie pacjentów z grzybicą skóry, obejmujące takie zdarzenia.

– Energiczne i racjonalne leczenie w tym samym czasie dla wszystkich zmian. Po znalezieniu pacjenta należy natychmiast zbadać wszystkich członków rodziny
– Dorośli i dzieci, z którymi pacjent spotkał się w szkole, przedszkolu itp…

-Systematycznie co miesiąc badaj wszystkie dzieci i opiekunów w placówkach opieki i szkołach.

– Pamiętaj o dezynfekcji bielizny, odzieży wierzchniej, pościeli i innych przedmiotów używanych przez pacjenta.

– Należy sprawdzić dzieci wchodzące do szkoły, żłobków i innych placówek opieki nad dziećmi, a także przed wysłaniem dzieci do obozu i po powrocie z niego.

– Pamiętaj, aby prowadzić rejestr pacjentów z chorobami grzybiczymi.

– Systematycznie prowadź nadzór sanitarny i epidemiologiczny fryzjerów, łaźni i koniecznie sprawdź pracowników tych instytucji.

Aby zaangażować instytucje weterynaryjne w aktywną walkę z chorobami grzybiczymi, konieczne jest systematyczne monitorowanie zwierząt domowych należących do placówek opieki nad dziećmi, innych instytucji, a także rodzin poszkodowanych.

Izoluj i leczyć chore zwierzęta.

Prowadzić szeroko zakrojoną edukację zdrowotną, głównie wśród uczniów i ich rodziców.

Zapobieganie i organizacja walki z grzybicą skóry

Walka z grzybicą skóry polega na wczesnej diagnozie, terminowej izolacji pacjentów i ich racjonalnym leczeniu, identyfikacji źródeł infekcji, zapobieganiu dalszemu rozprzestrzenianiu się i dezynfekcji wykrytego ogniska.

Konieczne jest jednoczesne leczenie wszystkich zmian (skóry, paznokci). Po zidentyfikowaniu pacjenta należy natychmiast zbadać wszystkich członków rodziny, w tym dorosłych (czarne punkty na skórze głowy i paznokciach) oraz dzieci, z którymi pacjent był w kontakcie (szkoła, przedszkole itp.).

Dzieci z rzęsistką mogą uczestniczyć w grupach dzieci w lnianym czepku na głowie po trzech negatywnych testach na grzyby i końcowej dezynfekcji w domu.

Po wypisaniu ze szpitala dzieci są zabierane do rejestracji w aptece i poddawane badaniom klinicznym i laboratoryjnym co 10 dni.

Pacjenci z przewlekłą trichofitozą gładkiej skóry, a zwłaszcza paznokci, nie powinni mieć możliwości pracy w placówkach opieki nad dziećmi, salonach fryzjerskich, pralniach, a pacjenci z epidermofitozą nie powinni mieć możliwości pracy w łaźniach i basenach. Dermatomikozy mogą być przenoszone przez odzież wierzchnią, pościel i bieliznę, czapki, zabawki, zeszyty i książki, między arkuszami których mogą znajdować się łuski z grzybami, a także przez maszynki do strzyżenia i inne narzędzia używane przez fryzjerów, manikiurzystów itp..

Dermatomikozy są najczęściej przynoszone przez chore dzieci do szkół, przedszkoli i żłobków, dlatego bardzo ważne jest, aby wszelkie wysypki na skórze, uszkodzenie skóry głowy i paznokci przyciągały odpowiednią uwagę nauczycieli, nauczycieli i rodziców.

Ogromne znaczenie ma szybka i właściwa dezynfekcja ognisk infekcji grzybiczych (odkażanie pacjentów, dezynfekcja artykułów gospodarstwa domowego używanych przez pacjentów, zakaz chorych dzieci z przedszkoli i szkół, zwolnienie pracowników placówek dziecięcych, fryzjerów, łaźni, izolinii podczas leczenia i leczenie chorych zwierząt).

Sukces w walce z grzybicą skóry ułatwia edukacja zdrowotna ludności, nauczycieli i uczniów, członków rodzin pacjentów.

Całą walkę z chorobami grzybiczymi wśród dzieci i dorosłych prowadzą gabinety mikologiczne w klinice wenerycznej i skórnej.

Dzieci powinny być okresowo badane jesienią przed szkołą i wiosną przed wakacjami. W przypadku wykrycia choroby grzybiczej w instytucji konieczne jest zbadanie całego zespołu co najmniej dwa razy w miesiącu, aż wybuch zostanie całkowicie wyeliminowany, a pacjenci wyleczeni. Kontrole kadry nauczycielskiej, fryzjerskiej, manikiurzystki, a także monitorowanie stanu sanitarno-higienicznego instytucji powinny być przeprowadzane regularnie pod nadzorem CKW.

Microsporia kotów: Etiologia, diagnoza i leczenie temat rozprawy i streszczenia na temat Wyższej Komisji Atestacyjnej Federacji Rosyjskiej 16.00.03, kandydat nauk weterynaryjnych Biryukova, Maria Vladimirovna

  • Specjalność Wyższej Komisji Atestacyjnej Federacji Rosyjskiej 16.00.03
  • Liczba stron 164

Treść kandydata rozprawy nauk weterynaryjnych Biryukova, Maria Vladimirovna

1.1 Skład gatunkowy i właściwości kulturowo-morfologiczne patogenów grzybicy skóry u psów i kotów.

1.2 Sposoby zwalczania grzybicy skóry.

1.3 Właściwości fizykochemiczne gryzeofulwiny.

1.4 Działanie przeciwgrzybicze gryzeofulwiny.

2. .1 Materiały i metody badawcze.

2.2 Niektóre problemy epizootologii i składu gatunkowego czynników wywołujących grzybicę skóry u kotów i psów

2.3 Opracowanie leku do zwalczania grzybicy skóry u kotów i psów, badanie jego działania przeciwgrzybiczego, toksyczności i skuteczności.

2.3.1 Badanie „Trimicide” na bezpłodność.

2.3.2 Badanie stabilności „Trimitsida” .bb

2.3.3 Badanie działania przeciwgrzybiczego leku „Tricid”.

2.4 Badanie toksyczności leku „Tricid” dla zwierząt laboratoryjnych, psów i kotów. a) Określenie ostrej toksyczności „tricyycydu” na białych myszach przez podanie doustne i domięśniowe. b) Określenie podostrej toksyczności i skumulowanych właściwości „trójpierścienia” u białych myszy po wprowadzeniu do żołądka. c) Badanie resorpcyjnego i miejscowego działania drażniącego na skórę „Trimitsida”. d) Badanie właściwości alergicznych środka „Tricicide” e) Badanie wpływu „środka Tricicide” na stan funkcjonalny układu nerwowego. f) Badanie toksyczności dla kotów i psów.

2.5 Skuteczność terapeutyczna leku „Tricid” u kotów microsporia.

2.5.1 Badanie skuteczności terapeutycznej „tricyycydu” w mikrosporiach eksperymentalnych.

2.5.2 Badanie skuteczności terapeutycznej „tricyycydu” u zwierząt spontanicznie zakażonych.

2.5.3 Badanie skuteczności terapeutycznej „Trimicide” w mikrosporii kotów z kociętami-przyssawkami.

3) DYSKUSJA WYNIKÓW.

Zalecana lista rozpraw specjalistycznych „Epizootologia weterynaryjna, mikologia z mikotoksykologią i immunologią”, 16.00.03 Kod VAK

Aktywność przeciwdrobnoustrojowa leku Mycovelt i jego zastosowanie w dermatomikozach i zakażeniach ran zwierząt 2010, kandydat nauk biologicznych Kudinova, Tatyana Anatolevna

Farmakotoksykologiczna i biologiczna ocena leku Dermadex w trichofitozie i mikrosporii zwierząt 2012, kandydat nauk biologicznych Kryuchkova, Marina Anatolievna

Specyficzna profilaktyka, leczenie rzęsistkowicy i mikrosporii zwierząt futerkowych, królików, małych zwierząt domowych: Skład gatunkowy, patologia patogenów, ocena porównawcza immunogenezy 1999, kandydat nauk weterynaryjnych Goryachkina, Elena Igorevna

Ocena farmakotoksykologiczna trimiksanu 2005, kandydat nauk biologicznych Ishkaeva, Dzhamilya Rafaelovna

Kliniczne, epizootologiczne i etiologiczne cechy manifestacji dermatofitozy psów i kotów w dużym mieście, poprawa schematów leczenia kotów z mikrosporią 2004, kandydat nauk weterynaryjnych Tugunova, Tatyana Borisovna

Wprowadzenie rozprawy (część streszczenia) na temat „Mikrosporia kotów: etiologia, diagnoza i leczenie”

Dermatomikozy są wysoce zakaźnymi chorobami skóry i jej pochodnymi powodowanymi przez grzyby z rodzajów Microsporum i Trichophyton i powodującymi znaczące szkody ekonomiczne, powodując niepokój, procesy zapalne w skórze, utratę masy ciała, zmniejszoną produktywność, zły wygląd, osłabioną ogólną odporność organizmu, co przyczynia się do pojawienia się wtórnych infekcji i często prowadzi do śmierci zwierzęcia.

Problem grzybicy skóry jest nadal aktualny, ponieważ nawet teraz obserwuje się enzootyczne wybuchy chorób u zwierząt (A.Kh. Sarkisov, V.P. Koroleva 1956, 1976.).

Ponadto trichofitoza i mikrosporia są zooanthroponozami i są przenoszone z chorych zwierząt na ludzi (A.M. Arievich, 1962; V.E. Prave, 1970; A.S. Obukhova, 1973; Y. Alteras, 1961; T. Kushida, 1978 ; K. Okamoto, 1994).

Według wielu autorów na obszarach wiejskich ludzie częściej chorują. rzęsistkowica (I.I.U.mnova i V.P. Fomenko, 1960; A.M. Arievich, 1962; P.N. Pesterev, 1970). Epidemiczne wybuchy mikrosporii obserwuje się częściej w miastach (K.F. Fomin i in., 1973; A.V. Bakhireva, 1973; A.M. Arievich i in., 1973, O.I. Haavelsrud, 1969, U. Kaben, 1976) .

W warunkach miejskich głównymi nosicielami i dystrybutorami grzybicy skóry są zarówno zwierzęta domowe, jak i bezpańskie koty i psy. Przeprowadzając badania na obecność grzybicy skóry u kotów domowych i psów w 75–80% przypadków, dermofit Microsporum canis izolowano od kotów. Zwiększa to ryzyko mikrosporii u ludzi, a zwłaszcza dzieci (AM Arievich, 1949.1971; V.E. Prave, 1970; AC Obukhova, 1973; Gromov G.M., 1976; Y. Alteras, 1961; T. Kushida, 1978; K. Okamoto 1994).

Bydło, konie, zwierzęta futerkowe, zwierzęta laboratoryjne i dzikie są również podatne na mikrosporię (HA Spesivtseva, I. G. Levenberg, 1964; I. A. Golubev, 1970; JI. I. Nikiforov, 1976; A. G. Mustakimov , 1976; K.N. Böhm, 1966; K. Hägen, Y. Gorham, 1972), a także delfiny (A.I. Bliznyuk, K.A. Dzhincharadze, 1977).

Rosnące zainteresowanie rasami dekoracyjnymi psów i kotów, tworzenie dużej liczby żłobków o wysokim stężeniu zwierząt na małych obszarach, naruszenie zasad weterynaryjno-sanitarnych i higienicznych stwarza dogodne warunki do rozprzestrzeniania się mikrosporii, co stwarza bezpośrednie zagrożenie infekcją człowieka.

Obecnie dokonano dużych zmian teoretycznych i praktycznych w celu zbadania grzybicy skóry zwierząt hodowlanych, aby znaleźć środki do specyficznej terapii i zapobiegania, i osiągnięto znaczny sukces. Tak więc stworzenie szczepionek TF-130 i LTF-130 umożliwiło praktycznie wyeliminowanie choroby rzęsistkowicy bydła w kraju (A.X. Sarkisov, S.V. Petrovich, L.I. Nikiforov, L.M. Yablochnik, 1972; A Kh. Sarkisov, 1976) .

Jak pokazała nam dostępna literatura, problemy zwalczania grzybicy skóry małych zwierząt domowych, a przede wszystkim mikrosporii? jako najbardziej zaraźliwa i niebezpieczna choroba dla ludzi, wymagają dalszych badań.

Ważnym ogniwem w systemie środków walki z grzybicą skóry małych zwierząt domowych, a także weterynaryjno-sanitarnych i higienicznych, jest terapia zwierząt. Terminowe i skuteczne leczenie nie tylko prowadzi do wyzdrowienia pacjenta, ale zapewnia bezpieczeństwo innym.

W leczeniu małych zwierząt domowych przetestowano znaczną ilość chemikaliów: roztwory kwasu salicylowego i siarczanu miedzi, fenoli, kreozotu, formaliny, lizolu, produktów olejowych i olejowych, zielone mydło, maść kreolinowa i azotowa, emulsja juglonu, dichlorofen i inne (Andrienko, 1955, 1961; HA Spesivtseva, 1964; S.I. Osmanov, 1996; K.P. K. Hagen, I. Gorham, 1972). Wiele testowanych leków było nieskutecznych, inne były bardzo toksyczne dla ciepłokrwistych, miały skutki uboczne i długoterminowe, zanieczyszczały środowisko. Biorąc to pod uwagę, wykorzystanie szeregu proponowanych funduszy było zabronione lub poważnie ograniczone, co zintensyfikowało prace nad stworzeniem narkotyków pozbawionych tych niedociągnięć.

Szczepionki przeciwgrzybicze opracowane w ostatnich latach za granicą i w naszym kraju (Polivak-TM, Mikroderm, Mikkanis) dla psów i kotów nie zawsze zapewniają oczekiwany efekt terapeutyczny *. W niektórych przypadkach po szczepieniu, a także po spontanicznej chorobie zwierząt, szczególnie u kotów ras dużych, rozwija się niestabilna odporność (A.V. Gorbatov, 1984).

Leki oparte na importowanych antybiotykach przeciwgrzybiczych, takie jak klotrimazol, nizoral i lamisil, są szeroko reklamowane w leczeniu grzybicy skóry u psów i kotów. Posiadające wyraźną skuteczność przeciwgrzybiczą z reguły fundusze zagraniczne są drogie, co w warunkach ograniczonej wypłacalności rosyjskiego konsumenta utrudnia dostęp do nich.

Biorąc powyższe pod uwagę, opracowanie skutecznego, bezpiecznego, wygodnego i ekonomicznego w stosowaniu leków do leczenia grzybicy skóry małych zwierząt domowych ma ogromne znaczenie naukowe i praktyczne.

Celem naszych badań było opracowanie i przetestowanie nowego preparatu środka przeciwgrzybiczego dla małych zwierząt domowych na bazie antybiotyku grisiofulwiny produkcji krajowej.

W tym celu przydzielono nam następujące zadania:

1. Badanie składu gatunkowego oraz właściwości kulturowych i morfologicznych dermatofitów wyizolowanych z materiału patologicznego kotów i psów z klinicznym obrazem grzybicy skóry i nosicieli;

2. W oparciu o grisofulwinę opracuj preparat unieruchomionego preparatu „Tricid” do podawania pozajelitowego i zbadaj jego właściwości grzybobójcze, toksyczne i skuteczność terapeutyczną;

3, Opracuj i przetestuj schemat leczenia mikrosporii kotów za pomocą leku „Tricid”.

Po raz pierwszy opracowano preparat przeciwgrzybiczy o unieruchomionym działaniu mTrimicide do podawania pozajelitowego na bazie antybiotyku gryzeofulwiny produkcji krajowej.

Ujawniono minimalne fungistatyczne stężenie trójpierścienia, ustalono optymalne dawki terapeutyczne i opracowano schemat leczenia kotów z różnymi postaciami mikrosporii.

Przeprowadzone badania toksykologiczne

Trimitsida "u zwierząt laboratoryjnych i małych zwierząt domowych. Ustalono, że lek należy do związków o niskiej toksyczności, ma słabo wyrażone właściwości kumulacyjne i nie wykazuje działania resorpcyjnego na skórę, miejscowo drażniącego i uczulającego.

Wykazano, że Trimitsid jest dobrze tolerowany przez koty różnych ras, płci i wieku, co pozwala uznać go za obiecujący lek przeciwko mikrosporii wysokich ras i młodych zwierząt.

Składniki pomocnicze zawarte w kompozycji przyczyniają się do lepszej penetracji gryzeofulwiny do miejsca lokalizacji dermatofitu i utworzenia jego depotu, mają właściwości bakteriostatyczne, odczulające, antytoksyczne, aktywują procesy regeneracyjne komórek skóry i zmniejszają odpowiedź bólową.

W wyniku wspólnej pracy z Laboratorium Toksykologii i Farmakologii VIEV uzyskano nowy unieruchomiony lek przeciwgrzybiczy LL Trimitsid, opracowano go i zatwierdzono przez Radę Naukową VIEV oraz zatwierdzono przez Dyrektora VIEV Academician z Rosyjskiej Akademii Nauk Rolniczych G.F. Koromysłowa:

Przepisy laboratoryjne dla leku „Tricid”; Tymczasowa instrukcja stosowania leku „Tricid” w mikrosporii kotów, królików i zwierząt futerkowych.

Główne przepisy rozprawy skierowanej do obrony: niektóre zagadnienia epizootologii i składu gatunkowego patogenów grzybicy skóry u psów i kotów; materiały na temat badania działania grzybobójczego i toksycznych właściwości leku „Tricid”; wyniki badania skuteczności terapeutycznej tricyycydu u kotów microsporia zakażonych spontanicznie i eksperymentalnie; praktyczne sugestie dotyczące stosowania leku „Trimitsid” w leczeniu mikrosporii kotów.

Testowanie wyników badań

Zgłoszono główne postanowienia rozprawy:

– na V międzynarodowej konferencji na temat małych zwierząt domowych, Moskwa, 1997.

– na VII Międzynarodowej Konferencji na temat Małych Zwierząt, Moskwa, 1999.

Publikowanie wyników badań

Główne postanowienia rozprawy są przedstawione w 4 publikacjach.

Zakres i struktura pracy

Rozprawa jest prezentowana na stronach i składa się ze wstępu, przeglądu literatury, badań własnych, dyskusji wyników, wniosków i wniosków.

Praca jest zilustrowana 17 tabelami i 5 fotografiami..

Lista referencji obejmuje 235 źródeł, w tym 105 zagranicznych.

Podobne rozprawy w specjalności „Epizootologia weterynaryjna, mikologia z mikotoksykologią i immunologią”, 16.00.03 kod VAK

Farmakoterapia chorób skóry psów o charakterze polietiologicznym 2011, kandydat nauk weterynaryjnych Erpelova, Tatyana Nikolaevna

Dermatofitoza małych zwierząt domowych w Jakucji 2011, kandydat nauk weterynaryjnych Ustintseva, Julia Yurievna

Cechy kliniczne i epidemiologiczne mikrosporii i rzęsistkowicy, podejścia do leczenia 2013, kandydat nauk medycznych Shchelkunova, Olga Aleksandrovna

Ocena farmakotoksykologiczna podstawionego benzodifurazanu 2003, kandydat nauk biologicznych Karimova, Rufiya Gabdelhaevna

Cechy rozprzestrzeniania się dermatofitozy u psów i kotów, zwiększanie skuteczności terapii przeciwgrzybiczej na Dalekiej Północy 2008, kandydat nauk weterynaryjnych Szałajew, Iwan Michajłowicz

Zakończenie pracy dyplomowej na temat „Epizootologia weterynaryjna, mikologia z mikotoksykologią i immunologią”, Biryukova, Maria Vladimirovna

1. Głównym czynnikiem wywołującym grzybicę małych zwierząt w mieście jest dermatofit M. sap1z.

2. Szczepy M. sage izolowane od psów i kotów nie wykazują istotnych różnic w ich właściwościach kulturowo-morfologicznych.

3. W celu zdiagnozowania mikrosporii psów i kotów konieczne jest zastosowanie szeregu badań, w tym mikroskopii materiału patologicznego, badań luminescencyjnych i kulturowych.

4. Opracowano lek „Tricid” oparty na krajowej produkcji gryzeofulwiny, który ma wysoką aktywność właściwą: minimalne dawki grzybobójcze, które hamują wzrost różnych szczepów M. sap! B, wynoszą 0,58–1,17 μg / ml.

5. „Trimicide” pod względem ostrej toksyczności odnosi się do leków o niskiej toksyczności: LD50 po podaniu białym myszom w żołądku wynosi 2050 + 311 mg / kg, po podaniu domięśniowym – 14 50 + 277 mg / kg masy ciała, ma słabo wyrażone właściwości skumulowane, a nie ma miejscowe działanie drażniące na skórę i nie powoduje reakcji alergicznych.

6. Lek „Trimitsid” z pojedynczym i wielokrotnym wstrzyknięciem domięśniowym w dawce terapeutycznej i dwukrotnym jej przekroczeniu jest dobrze tolerowany przez koty różnych ras, wieku i płci, nie powoduje skutków ubocznych i powikłań.

Zidentyfikowana selektywna toksyczność leku „Tricid” nie pozwala na zalecenie go w leczeniu grzybicy skóry u psów.

7. Lek „Tricid” podawany domięśniowo w dawce 100 mg / kg w odstępie 4-7 dni przez 25-30 dni ma wysoką skuteczność terapeutyczną w różnych postaciach kotów Microsporia.

8. Zastosowanie leku „Trimitsid” karmiącego koty zapewnia profilaktykę i leczenie mikrokosporii kociąt-odrostów.

9. Zastosowanie leku „Trimitsid” w leczeniu kotów jest ekonomicznie uzasadnione, ponieważ pozwala zmniejszyć częstotliwość podawania i zmniejszyć o ponad połowę całkowitą dawkę terapeutyczną gryzeofulwiny w porównaniu z doustnym podawaniem antybiotyku.

Referencje kandydata do pracy doktorskiej nauk weterynaryjnych Biryukova, Maria Vladimirovna, 1999

1. Arabian P.A. Perspektywy zastosowania nowych antybiotyków przeciwgrzybiczych. Ogólnounijne sympozjum dermatologów. Współczesne aspekty stosowania nowych antybiotyków w klinice. 1984, s. 1 107–109.

2. Arabian P.A. Immunologia grzybicza: badanie przesiewowe i strategia leczenia. Streszczenia III Międzynarodowego Sympozjum Mykologicznego „Patogeneza, diagnoza i terapia grzybic i alergii mykogennych” 1995, s. 17 .

3. Azimov I. M. Nośniki trichofitonu gipsowego. Medycyna weterynaryjna 1965, nr 12, s. 22–23.

4. Azimov IM, Muradova G. R. Microsporia zwierząt domowych w Baku. Zbiór prac naukowych Dagestan Veterinary Institute, 1970, tom 4, s. 96–99.

5. Aksenov V.I., Kovalev V.F. Antybiotyki w produktach pochodzenia zwierzęcego, 1977.

6. Aliyev R.K. Microsporia jako główna infekcja wśród grzybic u dzieci i jej antybiotykoterapia.

7. Streszczenie rozprawy o stopień kandydata nauk medycznych, 1974, s. 16.

8. E. Alyushin M.T. Polimery syntetyczne w krajowej praktyce farmaceutycznej. Medicine, 19’7 4, s. 1 51.

9. Andrienko KP Dermatomycosis (grzybica) zwierząt futerkowych i środki ich zwalczania. Biuletyn informacji naukowej i technicznej Instytutu Badawczego Hodowli Futra 1959, s. 31–32.

10. Andrienko K.P., Sysoeva T.A. Zastosowanie szarych reakcji alergicznych do diagnozy grzybicy skóry (u królików). Transakcje VNIIVS, 1964, s. 1 135–139.

11. Anisimova T.V. Microsporia u świń i zwierząt futerkowych. Państwowa produkcja rolna. 1954, nr 3, s. 87–88.

12. Arievich A.M. Do epidemiologii grzybicy. Medycyna radziecka, 1949, nr 5, str. 21–22.

13. Arievich A.M., Stepanishcheva Z.G. Spontaniczna trichofitoza u białych myszy. Microbiology, Epidemiology and Immunology, 1950, nr 6, str. 77–81.

14. Arievich A.M. Nowy antybiotyk gryzeofulwina w leczeniu grzybicy skóry (przegląd piśmiennictwa i własne obserwacje. Biuletyn dermatologii i wenerologii, 1961, nr 2, s. 30–39.

15. Arievich A.M. „Środki zwalczania grzybicy skóry powszechnej u ludzi i zwierząt. Proceedings of VNIIVS, 1964, v.23, s. 19-22.

16. Arievich A.M. Chemioterapia chorób grzybiczych. Journal of All-Union Chemical Society. Mendelejew, 1965, w. 10, nr 6, str. -658-663.

17. Arievich A.M., Obukhova A.C., Zizerman V.E. Status i perspektywy organizacji walki z mikrosporią. Streszczenia III Wszechrosyjskiego Kongresu Dermatowenerologów Moskwa, 1971, s. 32-33.

18. Arutyunov V.Ya., Podolia T.N. Griseoful vin jest skutecznym lekiem w leczeniu chorób grzybiczych. Medycyna radziecka, 1963, nr 7, s. 45-50,2 0. Afanasyev G.V. Właściwości immunogenne dermatofitów Microsporum canis i Trichophytum mentagrophytes.

19. Streszczenie rozprawy o stopień kandydata nauk weterynaryjnych, 1987.

20. Afanasyeva V.D. Dane porównawcze dotyczące leczenia mikrosporii wywołanej przez M.canis, gryzeofulwinę, biorąc pod uwagę niektóre cechy jej patogenezy. Biuletyn Dermatologii i Wenerologii. 1976, nr 3, s. 84–87.

21. Baranov Yu.A., Yudina Z.P., Korotkova E.H. Badanie gleby pod kątem obecności dermatofitów w ogniskach grzybicy skóry. Materiały z konferencji naukowej lekarzy miejskiego wydziału zdrowia w Soczi. 1970, s. 1 244–246.

22. Bahireva A.B. i wsp. w sprawie leczenia rzęsistkowicy mikrosporii i fawusa gryzeofulwiny-forte. Zbiór prac Instytutu Badawczego Chorób Skóry i Wenerycznych w Swierdłowsku, 1971, nr. Nr 7, s. 1 3-14.

23. Bakhireva A.B. O występowaniu mikrosporii i organizacji walki z nią. Problemy z mikologią. Zbiór prac Instytutu Skóry i Wenerologii Gorky Research Institute 1973, wydanie 8, s. 1 11–18.

24. Beznos T.I. , Lab A.C. Przerywane leczenie mikrosporii gryzeofulwiną. Biuletyn Dermatologii i Wenerologii. 1966, nr 6, s. 23.

25. Beznos T.I., Tomenko I.F., Milenina E.V. Wpływ prodigiosanu i gryzeofulwiny na reaktywność immunologiczną w eksperymentalnej mikrosporii, 1972, nr 12, S. 52-57.

26. Bliznyuk A.I., Dzhincharadze K.A. Zastosowanie gryzeofulwiny w grzybicy skóry u delfinów. Veterinary Medicine, 1977, nr 10, str. 73.

27. Bystrova V.V., Kondratyev A.A. Ocena działania przeciwgrzybiczego domowego antybiotyku, gryzeofulwiny. 1961, s. 27.3 6. Wind I .A. Clinical Study of Veterinary Medicines, 1979, s. 55.

28. Volkov I.B. Obiecujące formy dawkowania środków przeciwdrobnoustrojowych w weterynarii. Tezy Konferencji Ogólnounijnej Moskwa, 1987, s. 27–28.

29. Golubev I. A. Epizooty trichofitozy białych myszy. Zbiór prac naukowych Lwowskiego Instytutu Weterynaryjnego, 1947, w.1, wydanie 1, s. 188–189.

30. Gorieva H.M., Sayyan E.Sh., Usacheva A.M. Wpływ gryzeofulwiny na niektóre układy enzymatyczne u pacjentów z mikrosporią spowodowaną zardzewiałym mikrosporum w gorącym klimacie Turkmenistanu. Pytania dotyczące dermato-wenerologii regionalnej, 1976, v.3, s. 22–25.

31. Gorbatov A.B. Spontaniczna Microsporia psów, Bull. VIEV, 1983, wydanie 50, s. 47

32. Gorbatov A.B. Dermatomikoza małych zwierząt domowych. Streszczenie rozprawy o stopniu kandydata nauk weterynaryjnych, M.198 4 s. 13.

33. Gromov G.M. Zapobieganie mikrosporii u kotów i psów w mieście. Zbiór prac naukowych Instytutu Weterynaryjnego w Leningradzie, 1976, wydanie 43, s. 84–87.

34. Zhirkova V.P., Radchenko E.I. Charakterystyka porównawcza leczenia pacjentów mikrosporią gryzeofulwiny-forte według schematów ciągłych i nieciągłych. Zbiór prac Gorky Scientific Research Dermatovenerologic Institute 1973, nr. 8, s. 17–19.

35. Zelmanov R.B. i wsp. Efekt terapeutyczny gryzeofulwiny domowej w eksperymentalnej grzybicy świnki morskiej. Zbiór prac naukowych Instytutu Naukowego Antybiotyków z Leningradu 1962, w. 3.95-100.

36. Kashkin P. N. Mikologia medyczna. Medgiz, 1962, s. 1 159-161, 177-178.5 6. Kashkin P. N. O badaniu nowoczesności mikrospor. Zbiór prac Gorky Scientific Research Dermatovenerologic Institute, 1973, nr. 8, p. 5-16.

37. Cogren I., T. Gratter W książce: Medical Mycology, 1978, s. 351.

38. Koroleva V.P. Wrażliwość grzybów chorobotwórczych na antybiotyki. Antibiotics, 1964, nr 1, s. 62–72,5 9. Koroleva V.P., Akulova V.P. Skuteczność antybiotyków dla grzybicy u bydła. Veterinary Medicine, 1963, nr 10, str. 48.

39. Koroleva V. P. Diagnostyka laboratoryjna patogenów rzęsistkowicy bydła. Bull. VIEV, 1976, no. 24, s. 39–42.

40. Wiceprezes Koroleva Występowanie patogenów dermatomikoz zwierząt w różnych strefach Unii. Bull. VIEV, 1976, no. 25, s, 49–52.

41. Kutsenko A.K. Gryzeofulwina w leczeniu chorób grzybiczych. Military Medical Journal, 197 4, nr 2, s. 62–64.

42. Levenberg I. G. Materiały do ​​badań mikserserii srebrno-czarnych lisów. Proceedings of VNIIVS, 1960, v.16, s. 379-382.

43. Levin M.I. O cechach klinicznych mikrosporii podczas infekcji zwierząt. Tr. rep. KVI, 1956, v. 11, s. 14.

44. Loginov A.B. i wsp. Właściwości farmakologiczne gryzeofulwiny. Sob naukowy tr Leningrad Scientific Research Institute of Antibiotics, 1962, v. 3, s. 1 74–82.

45. Mansurova I.D., Kiyamov F.A. Wpływ gryzeofulwiny na aktywność niektórych enzymów i polarogramów surowicy krwi u pacjentów z trichofitozą i mikrosporią. Biuletyn Dermatologii i Wenerologii, 1973, nr 11, str. 48-52.

46. ​​Manuylova L.A., Yutskovsky A.D. Optymalne dawki gryzeofulwiny w leczeniu pacjentów z mikrosporią. Dermatology and Venereology, 1977, nr. 12, p. 67–71.

47. Markovich A.B. i inne Antybiotyk gryzeofulwiny do leczenia pacjentów z grzybicą skóry. Sob naukowy prace Instytutu Naukowego Antybiotyków z Leningradu, 1962, t. 3, s. 8–61.

48. Mustakimov A.G. Środki kontroli mikrosporii składników odżywczych w Tadżykistanie. Tr. Tadżycki S.-kh. Institute, Dushanbe, 1976, v. 26, s. 36-37

49. Nechaev-Pugacheva E.B., Sizova A.B. Doświadczenie w leczeniu pacjentów gryzeofulwiny z grzybicą skóry głowy w szpitalu dla dzieci ze skórą. Bulletin of Dermatology and Venereology, 1963, nr 9, s. 81–82.

50. Noskov A.I., Dzhilavyan H.A., Levenberg I.G. Skuteczne leczenie grzybicy u bydła. Tr. VNIIVS, 1959, v. 14, s. 86.

51. Noskov A.I., Ryabova G.S. Walka ze znamieniem zwierząt gospodarskich, M., Kolos, 1961, s. 21.

52. Osmanov S.I. Dermatomikoza zwierząt i środki do ich zwalczania. Machaczkała, 1993, s. 405.

53. Parfenov I.S. Racjonalne postacie dawkowania antybiotyków na choroby młodych zwierząt. Tr. VIEV, 1983, v. 58, s. 1 120–130.

54. Sarkisov A.Kh., Noskov A.I., Koroleva V.P. Książka: Ringworm, M., 1956, s. 405–423.

55. Sarkisov A.Kh., Koroleva V.P., Nikiforov L.I. Otrzymywanie i stosowanie ekonomicznych form gryzeofulwiny do zapobiegania rzęsistkowicy. Veterinary Medicine, 1965, nr 12, s. 18–21.

56. Sarkisov A.Kh. Dermatomikoza zwierząt i nowoczesne sposoby zapobiegania. Bull. VIEV, 1981, wydanie 42, s. 4.

57. Sarkisov A.Kh., Petrovich C.B., Nikiforov L.I., Yablochnik L.M., Koroleva V.P. . Szczepienie bydła przeciwko grzybicy. Veterinary Medicine, 1971, nr 2, str. 54-56.

58. Sentsov G.Ya. Materiały do ​​badania przeciwgrzybiczej aktywności nizoral. Proceedings * VNIIVS, 1962, s. 54.

59. Siluyanova H.A. Właściwości przeciwgrzybicze gryzeofulwiny. Sob Leningrad Scientific Research Institute of Antibiotics, 1962, t.Z, p. 62–66,9 6.Spesivtseva H.A. Książka: Grzybice i mikotoksykozy. M., 1964.

60. Spesivtseva H.A., Levenberg I. G. Microsporia zwierząt futerkowych i drapieżnych. Tr. VNIIVS, 1964, w. 23, s. 1 120-123.

61. Stepanishcheva Z.G. W książce. : Rzeczywiste pytania dotyczące patogenezy i terapii chorób skóry i wenerycznych, M., 1965, nr 1, s. 1. 27,9 9.Stepanishcheva 3. G. Klinika i przebieg mikrosporii u kotów. Veterinary 1952, nr 5, str. 1 40–42.

62. Stepanishcheva 3.G., Zizerman V.E. O metodzie oznaczania gryzeofulwiny w skórze i włosach. Biuletyn Dermatologii i Wenerologii, 1963, nr 9, str. 1. 26–28.

63. Stepanova Zh. V. W kwestii epidemiologii, kliniki i leczenia mikrosporii z powodu puszystego mikrosporum. Streszczenie diss. do pracy. student Art. Cand. kochanie Sciences, 1970, s. 21.

64. Timofeeva E. D. Doświadczenie w leczeniu rzęsistkowicy gryzeofulwiną. Zachód skóra właściwa i wenerologia, 1962, nr 2, s. 39.

65. Timofeeva E.D. Do metody leczenia mikrosporii gryzeofulwiny. Vestn. Dermatology and Venereology, 1965, nr 4, s. 7-10.

66. Timofeeva E.D. Leczenie pacjentów z rzęsistką gryzeofulwiny. Streszczenie Doct. kochanie sciences, 1965, s. 37.

67. Umnova I.I., Fomenko V.P. Trichofitoza myszy polowych, która spowodowała zakażenie człowieka. Biuletyn Dermatologii i Wenerologii, 1960, nr 11, „s. 36–38.

68. Umnova I.I., Bakhireva A.B. Rozkład geograficzny i dynamika flory dermatofitów w RSFSR. Ogólnounijny kongres dermatowenerologów, Charków, 25–29.09. 1973, s. 1 187.

69. Faustova A.I. Gryzeofulwina w leczeniu pacjentów z grzybicą skóry Streszczenie. diss. do pracy. naukowiec Art. Cand. kochanie Sciences, Kursk, 1967, s. 14.

70. Felker A.Ya., Mezhova E.A. Porównawcze wyniki leczenia pacjentów z trichofitozą za pomocą dawek depilacyjnych zdjęć rentgenowskich, plastra epiliny i gryzeofulwiny. Vestn. dermatologia i wenerologia. 1973, s. 1 83–88.

71. Kharenko V. I. O zmianie morfologii krwi podczas leczenia gryzeofulwiną. Mater. 3. naukowy Sesje Leningrad. Naukowy Instytut Antybiotyków, 1963, s. 1 83–88.

72. Huber F. Griseofulvin W książce: Mechanizm działania antybiotyków, M., 1969, s. 188–187

73. Kholod P.I., Dedobrishvili I.D. Grzybica skóry w regionie Czerkaskim. Bulletin of Dermatology and Venereology, 1964, nr 4, s. 86–88

74. Chimakadze G.A. Skuteczność terapeutyczna i profilaktyczna. gryzeofulwina w trichofitozie królików w kompleksach przemysłowych. Bull. VIEV, 1978, no. 32, s. 1 32–38.

75. Chukashov G.V. Materiały dotyczące badań mikrosporii zwierząt domowych. Tr. VNIIVS, 1957, w. 12, s. 341–356.

76. Chukashov G.V. Microsporia zwierząt domowych i walka z tym. Veterinary Medicine, 1958, nr 12, str. 48–49.

77. Chukashov G.V. Badania mikrosporii zwierząt domowych. Streszczenie do pracy. student Art. Cand. weterynarz Sciences, M., 1960, s. 15.

78. Chukashov G.V. Doświadczenie w walce z mikrosporią zwierząt domowych. Tr. VNIIVS, 1964, v. 23, s. 114-119.

79. Shadyev X.K. Ultrastruktura Microsporum canis i jej zmiany pod wpływem gryzeofulwiny. Streszczenie do pracy. student Art. Cand. kochanie Sciences, 1976, s. 1 21.

80. Sharapov V.M. Badanie terapeutycznych i profilaktycznych właściwości gryzeofulwiny. Tr. VNIIVS, 1964, v.23, s. 71-75.

81. Sheklakov N.D., Stepanova Zh.V., Leshchenko V.M. i wsp. Rzeczywiste problemy terapii pacjentów z mikrosporią. Thes. dok. : All-Union Congress of Dermatovenerologists, 1973, s.176-177.

82. Sheklakov V.M., Leshchenko V.M., Umnova I.I. Główne problemy walki z grzybicą skóry i grzybic w RSFSR. Tr. 3 Wszechrosyjski Kongres Dermatowenerologów, Gorky, 1973, s. 32-35.

83. Sheklakov N.D., Letuta G.S. Rola czynników klimatycznych i naturalnych w epidemiologii mikrosporii wywołanej przez Microsporum canis. Biuletyn dermatologii i wenerologii, 1977, nr 1, s. 24–27.

84. Sheklakov ND, Andriasyan S. G. Niektóre cechy środowiskowe Microsporum canis i występowanie mikrosporii z zooanthroponicznych. Bulletin of Dermatology and Venereology, 1981, nr 9, str. 47-51.

85. Alteras I., Avram A. Flora grzybowa regionu Bukhara. Bulletin of Dermatology and Venereology, 1961, nr 2, s. 1. 89.

86. Anderews A.N., Edvardser I. Leczenie grzybicy u calvesen śpiewać gryzeofulwina. Veter.Rec., 1981, tom 108, nr 23, str. 498-500.

87. Atkinson R. M., Bedford C. i in. Wpływ cząstek gryzeofulwiny, jej wielkość na poziom we krwi u człowieka. Antib. a) Chemioterapia, 1962, w. 82, N 4, s. 1. 232–238.

88. Avram A., Altéras I., Cariewchi L. Microsporie oserve chez un group a lious en captivité. Mykopata Mykologia. Appl., 1963, N 4, s. 49.

89. Balaci P. Antibiotice przeciwgrzybicze. Revista de Zootehnie si medicina veterinara, 1971, v. 21, N 8, s. 1 78–81.

90. Baxter M. Grzybica wywołana przez Microsporum canis u kotów i psów w Nowej Zelandii. N. Z. Veter. J., 1973, v. 21. N 3, s. 1 33–37.

91. Beamond N. Logue vs. versus longue. Bull. Sol. Weterynarz Pract.Fr., 1989, t. 73, N 2, str. 57-66.

92. Bedford C., Bus fie Id D. i in. Badania nad biologicznym rozmieszczeniem gryzeofulwiny, doustnego leku przeciwgrzybiczego. Arch. Dermat., 1960, w. 81, N 5. p. 735–745.

93. Belloff G.B. Karmienie griaeofulwiny w leczeniu rzęsistkowicy (grzybicy) u szynszyli. Vet.Med., 1967, v. 62, N 5, str. 438–440.

94. Bisping W. Dermstomycoses i tam znaczenie jako zooantroponoses. Deutsch.Med. Wschr., 1963, v. 88, N 3, s. 584-582

95. Bloom B.R., Glade Rh. R. Metody badania odporności komórkowej in vitro (tłumaczenie angielskie), M., Medicine, 1974, s. 302,14 3. Bohm K. N. Nachweis von dermatophyten bei hautgesunden Tieren.Zbl. Bacteriol. 1, 1966, v.201, N 4, str. 506-510.

96. Braun W. Nowe poglądy na temat immunobiologii w trichofytozach w Hegvi E (red.). Resent zaleca Human and Animal Micology. Bratysława, Czechosłowacja, Wydawnictwo Słowackiej Akademii Nauk, 1967, s. 301-303.

97. Brindani F. Dermatomicosi bovina. ODV Cbiettivi Doc veter., 1986, an.7.14. 6. Chilardi S. Oxytetracyklina roztwór do podawania pozajelitowego, doustnego, miejscowego i procesu produkcji. Patent USA 4020162, opatentowany 26.4.77.

98. Coedberg J. D. Kompozycja antybakteryjna. Urząd patentowy USA 3944668, opatentowany 16.3.76.

99. Cordon Ph.N., Lyme 0., Stephens Ch.L. Kompozycja terapeutyczna zawierająca wieloalkoholowe roztwory antybiotyków typu tetracylinowego. US State Office 3017323, opatentowany 16.2.62.

100. Danovan E.F., Bohl E.H. Zastosowanie gryzeofulwiny w leczeniu grzybicy. Weterynarz Med., I960, w. 55, N 7, str. 49–55

101. Dvorak J., Otcenasek M. Diagnostyka mikologiczna dermatofitoz zwierzęcych. Prague Academia, 1969, s. 213.

102. Faravelli G., Poli G., Jiovannini R. Terapia delle dermatomicosi nel cane e nel gatto. Clin. Veter., 1973 .’v. 96, N 2, s. 1 51-55.154. Fox F.G. i „Blaxall F.R. Uwaga na dwa przypadki grzybicy .circinata. British J. of dermatology 18 92, 112, str. 354.

103. Dronae R., Bikford A.A. i in. Favus w stadzie przydomowych kurczaków. Avian Dis, 1991, v. 35, nr 3, str. 625–630.

104. Gabriela i in. Apifitoterapia o nona metoda de Combatere a tricofiti metoda de la tineretul. Inst. Cere Prod. Cresterea Balotesti. Bucuresti 1990, v. 12, s. 1 133–143. j

105. Gedek B. Dermatomikosen beim Rind. Prakt Tierarzt., 1975, N2, s. 67-70.

106. Gentles J.C., Barnes M.J. Raport z eksperymentów na zwierzętach z gryzeofulwiną. Zawartość gryzeofulwiny we włosach. A.M.A. Arch. Dermat., 1960, w. 81, N 5, str. 703–708

107. Gierloff B.C. H., Katio J. Om advendelse af griseofulvin Specielt i veterinaer praksis. Nord. Weterynarz Med. 1961, w. 13, N 11, s. 1. 571–592.

108. Guth E., Gründer H.D. Orale Behandlung der Trichophytie des Rindes. Tierar.Unmscham., 1990, N 10, s. 707-709.

109. Heavelsrud O.J. Microspori. „En epiderni i Sunnfj ord fororsaket av Microsporum canis. Medlemsbl.Norske Veter.Forkn, 1969, w. 21, H. 7/8, s. 411–414.

110. Hägens F. Huidschimmelziekten bi j Dieren. 1976, w. 101, N 16, s. 1. 885–899.

111. Hajsig D., Modric Z. Enzootijo ​​u zamorcadi uzrokovana s granularaim tipom dermatofita. Trichophyton mentagrophytes. Weterynarz Arch., 1973, w. 45, N 3/4, str. 1. 71–75.

112. Hajsig M., Sertic V., Naglie T. Pierwsze ustalenia zakażeń Microsporum gypseum i M. canis Zakażenia u psów i kotów w Zagrzebiu. Weterynarz Arch., 1975, w. 45, N 5/6, s. 117–121.

113. Heckert H., Grunder H. Untersuchunden über Vorkommen. Häufigkeit und Ursachen von Hautkranheiten bei Ridern. Prakt Tierarzt1988, Jg 69, N 7, s. 45–48.

114. Hofman W., Nieper L. Zur Behandlung von Pilzekrankungen bei Pferden und Rindern mit Griseofulvin Supplement. Tierarzt., 1972, v. 27, N 7, s. 348–350.

115. Jesenka Z., „Danilla T. Ein Beitrag zur Bestimmung der Empfindlichkeit der Dermatofyten gegen Gryzeofulwina in vitro. Zbl. Bacteriol., 1971, v. 217, N 1, s. 1. 105–110.

116. Kaben U. Verbreitung und Epidemiologie Dermatomicosen Tierischen ursprungs. Mykosen, 1967, v. 10, N 2, s. 1 47–60.

117. Kaplan W., Ivons M. Obserwacje dotyczące sezonowych różnic w występowaniu grzybicy u psów i kotów w USA. Sabouraudia, 1961, v.l, str. 91–102.

118. Kiser L. Leczenie doustne grzybic gryzeofulwiną. Dermatología, 1960, v. 121, N 7-9, s. 52-62.

119. Trzymaj J, gryzeofulwina w leczeniu kociego grzybicy. Aust. Vet. 1960, v. 35, s. 374.

120. Kamyszek F. Przypadek grzybiey Drobnozarodnikowej psow i kotow Wywolanej przez. Microsporum canis. Med. Weterynarz 1971, w. 27, N 11, str. 1. 665–667.

121. Kaplan W., – Ajello L. Leczenie doustne spontanicznego grzybicy u kotów gryzeofulwiną. J. Amer. Vet.Med. Ass., 1959, N 9, P. 253-254.

122. Krauss S., Woloszun S. Badania nad wystepowaniem grzybic skornych (dermatofitoz) u budla. Med. Veter., 1968, v.24, N 12, str. 712–718.

123. Kristensen S., H.V. Krogh. Badanie chorób skóry u psów i kotów. Zakażenie grzybicy. Nord. Weterynarz Med. 1981, N 3, s. 1. 134–140.

124. Kushida T. Badania nad grzybicą skóry u psów. Bull. Nippon Vet. i zoot. College., 1976, N 25, str. 1. 141-142.

125. Kushida T. Badanie dotyczące grzybicy u psów i kotów. Bull, Nippon Vet. oraz Zootechnical College, 1976, N 27, s. 33–46.

126. Kushida T., Kojuna K. Tr. zakażenie mentagrofitami u psów myśliwskich. Jap. J. Small Animal Derm., 1978, w. 5, str. 33-36.

127. Ed. Kuttin E.S., Baum G.L. Mykologia ludzi i zwierząt. 7. Kongres ISHAM, Jerozolima, 11-16. 03. 1979, Amsterdam. E., ExpertaMed., 1980, v. 15, s. 342.

128. Lapcevic E., Ciric V., Majanovic D. Dermatjmickosa kod coveka, pies macke prouzrokovana Microsporum canis. Weterynarz Glasnik., 1972, w. 26, N 4, s. 235–237 .

129. Lauder I.M., O’Sullivon J.G. Grzybica u bydła. Zapobieganie i leczenie gryzeofulwiną. Weterynarz Ree., 1958, w. 70, N 47, s. 1 949–951.

130. Lindemann D. Böhm K.H. Ausbeitung einer Microsporum canis. Zakażenie w. einem Landwirtzehaftlichen Betrieb (Fallbescheibung). Berl. u. munch, tierarztl. Msch., 1994, Jg. 107, H.12, s. 413-416.

131. Londero A.T. Zakażenie Microsporum w Rio Grande do Sul (Brazylia). Derm.Trop., 1963, w. 7-8, N 2.pl64-167.

132. Mackenzie D.W.R., Rusk L.W. Diagnostyka mykologiczna Med. J. 1962, w. 33, str. 94-100.

133. Mc Curdy H. D., Hepler D. I., Larson K. A. Skuteczność tropikalnego środka przeciwgrzybiczego (klotrimazolu) u psów. J.Am. Weterynarz Med. Assn., 1981, w. 179, N 2, str. 1. 163–165.

134. Mantelli F., Faravelli G., Gelmetti D. Jmpiego del Trattaprentj combinato griseofulvina tolnaftato nella terapia delle dermatomicosi del cani e gatto. Clin. Veter., 1978, w. 101, nr 9, str. 511-557.

135. Martin A.R. Systematyczne i miejscowe leczenie eksperymentalnej dermatofitozy gryzeofulwiną. J. Investig. Dermatol., 1959, w. 32, N 4, str. 525-528.

136. Martins H.M., Mandes M. Restreo de dermmatofitos em animal de companhia ein Portugal, rep. Trab Lab. Nac. Dochodzenie Weterynarz Lisboa, 1989, v.21, s. 83-87.

137. Melnarowicz T. Ectimar-preparat do zwalc zat. Nowosci Wet., 1977, w. 7, # 4, str. 411-416.

138. Menchaca E.S., Martin A.M., Moras E.V. Enfemedades infecciosas de la chinchilla. Dermatofitos, Trichophyton mentagrophytes, Microsporum canis.

139. Mitra S.K., Sikdar A. i in. Perspektywiczne badania dermatofitoz u bydła. Ind. Weterynarz J., 1990, v. 67, s. 1 495–497.

140. Muhammed S.I., Lalji N. Dystrybucja geofilnych dermatofitów w glebach kenijskich. Mycopatologia, 1978, v. 63, N 2, s. 1 95–97.

141. Otcenasek M., Kcemarek J., Dvorac J. Microsporie kocek a psa Vyvolana Dermatophyten Microsporum canis Bodin. Weterynarz Med. (Praga), 1974, v. 19. bd. 2 \ 3, s. 169–172.

142. Otcenasek M., Dvorak J. Griseofulvin-sensiviti testowany in vitro jako Hilfsmetrhode zur Unterschet durch von Trichophyton mentagrophytes und Tr. rubrum. Zbl. Bakteriol. J., 1971, Bd. 217, godz. 196, s. 103.

143. Pandey V.S. Wpływ tiabendazolu i nalewki jodu na grzybicę bydła wywołaną przez Trichophyton verrucosum. Trop, zdrowie zwierząt Product, 1979, v. 11, N 3, s. 175-178.

144. Petrovich i in. üspjesi "immunoprofilakse trihofitije u goveda. Vet. Glasnik, 1977, v. 31, nr 3, s. 195-200.

145. Pinard M., Chermermette R. i in. Diagnoste et profhylascie des teignes, des carnivores domestiques: etude critique a patir d’une enquete a e Ecole nationale vaternare d’Alfort. Ree.Med. wet., 1987, w. 163, N-12, str. 1107–1116.

146. Pinault L., Crestian J. Przeciwgrzybicze leki weterynaryjne I. Substancje syntetyczne. Ree Med. wet., 1978, w. 154, s. 419–424.

147. Porget G.E., Walpole A.E. Eksperymentalna toksykologia gryzeofulwiny. A.M.A. Ach. Dermat., 1960, V.81, N 5, str. 750.

148. Prazak G., Feerguson I.S., McNeil S.S. Leczenie grzybicy stóp za pomocą gryzeofulwiny. Arch. Dermat., 1960, w. 81, s. 1 821–826.

149. Priboth W. Microsporum canis als einer ensootischen Dermatomykose bei ferkeln. Mh Weterynarz Med., 1962, V.17, N 13, str. 1 521-526.20 9.Rabell G., Taplin D. Dermatophites. Uznanie i identyfikacja. Miami (Floryda), 1974, s. 124.

150. Refal M. i wsp. Uber das Vorkommen von Trichophiton Verrucosum. Infektionen in Ęgypten mit Hinwes auf die Behandluno und Griseofulvin. Dtsch. Hierarchtl. Wschr., 1976, w. 83, nr 5, str. 62-64.

151. Reuss U. Ein Beitrag zur Behandlung der Trichophytie bei Pferden. Dtsch. Hierarchtl. Wschr., 1978, w. 85, N 6, str. 231–235.

152. Reuss U. Behandlung der Rindertrichphitie mit Griseofulvin enthaltenden Präparaten. Dtsch. Hierarchtl. Wschr. 1978, N2, s. 85-90.

153. Rieth H., Dreisorner H. Ekennung und Behandl undder Microsporie bei Katzen und Hunden. Teirarztl. Umsch., I1963, v. 18, N 7, s. 350-353.

154. Rees A.S. Uwagi na temat grzybicy zwierząt. Phillip J. Veter. Med., 1972, w. 11, nr 2, str. 16-27.

155. Robinson H.M., Robinson R.S.V. i in. Eksperymentalne badania na zwierzętach z gryzeofulwiną. A.M.A. Arch. Dermat., 1960, w. 81, N 5, str. 708.

156. Rosental S.A., Golbarb N., Baer R.L. Terapeutyczne działanie gryzeofulwiny u świnek morskich. J. Inst. Dermat., 1959, w. 33, str. 419-426.

157. Salambere M., Rouille D. Infekcja grzybicy u cieląt z powodu Trichophyton mentagrophytes. Bull. Anim. Prod.Afr., 1990, N 2, s. 159-161.

158. Sand S.K., Singh K.B., Narula A.S. Badania in vitro wrażliwości leków na grzyby. Indian Vet.Y., 1978, v. 55, str. 807-809.

159. Scott A. Zachowanie radioaktywnego Grisoefulvin w skórze. Nature, I960, .187, N 8, p.705-705.2.20. Schchoder E. Tribenzole (Thiabensole) zur

160. Becampfung der Trichophitie beim Rind. Prack Tierarzt., 1979, Bd.60, N 9, s. 578-765.221. ”Sebouraud R. Dermatomikozy wspólne dla ludzi i zwierząt, Brit. Med., 1908, vol. 7, nr 2.

161. Sienorini G., Pera R. i in. Validazione della effecacia terapeutica nella vacca da latte di un antybiotyk a lunga attivata ODV Obietteve Doc. Veter., 1985, an.6, N 9, str. 67-69.

162. Somora J., Dobsinky 0. Efektivnost novych antimykotickych pripravku proti trichofytil u telat. W Sbornik z-Vet. konf. na pocest 30. Praha, 1976, s. 583-587.

163. Spanoghe L., Oldecamp E.P. Obserwacje mikologiczne i kliniczne dotyczące grzybicy u bydła po leczeniu natamycyną. Weterynarz Rec., 1977, w. 101, nr 7, str. 135–136.

164. Szeleszczuk O. Crzyhice narsadowe zwilzat futerkowijch. Hodowa drobn. Invent1984, r.32, Nl, s.l3-15.

165. Tacatori K., Kawai i in. Izolacja Trichophiton verrucosum z gleby u bydła. Hodowla Enviroments, Japan veter. Sc., 1990, w. 52, nr 4, str. 1. 823–824.

166. Thomsett L.R. Choroby grzybicze skóry małe zwierzę. Brit, veter. J., 1986, w. 142, nr 4, str. 317-325.

167. WawzkiewiczK. Antibiotyki przeciwgorzybienze. Charakterystyka Ogolna. Med. Veter1971, r. 27, N 10, s. 577-580.

168. Weber A., ​​Vogel A. Die Wichtigsten bakteriellen Infektionserreger Hund udn Katze. Klinik, Diagnose und ein Vorschlag zur Antibiotikatherapie. Pract.Tierarzt., 1983, Jg.6, nl0, s.906-912.

169. Williams D.J., Marten R., Sarkany J. Leczenie doustne grzybicy za pomocą gryzeofulwiny. Jancet., 1958, N 2, str. 121-122.

170. Woloszyn S., Andrychiwicz. Badania nad wystepowaniem i zwalczaniem Grzybic skornych koni. Med. Vet., 1976, V.32, N 1, str. 14-20.

171. Zacharova T., Tomenko I. Die immunologische Activität unter der Therapie mit Griseofulvin und pyrogenen Präparaten bei der Mikrosporie. Derm. Msch. 1976, Bd. 162, H.2, s. 171–172.

172. Zukerman I., Yeruhan I. i in. Liszaj obrączkowy w nosie, któremu towarzyszy zakażenie człowieka. Israel J. Veter. Med., 1992, w. 47, nr 7, str. 34-36.

173. Rosja * ”w okresie od 3 marca do 30 maja 1997 r. Skuteczność terapeutyczną i profilaktyczną leku Trimitsid przetestowano na mikrospory kotów z kociąt miotu.

174. Wszystkie zwierzęta umieszczono w jednej zagrodzie i tego samego dnia rozpoczęto podawanie domięśniowe kotom leku „Tricid” w dawce 100 mg / kg masy ciała w odstępie 4 dni.

175. Weterynarz schroniska „Rus Vetfeldsher U1. AKT wyników badań miejscowego działania drażniącego i resorpcyjnego skóry„ Trimitsida ”na białych szczurach 25 września 1998 r.

176. My, niżej podpisani, opracowaliśmy niniejszy akt, zgodnie z którym od 10 sierpnia do 20 września 1998 r. Przeprowadzono eksperymenty na białych szczurach w wiwarium farmy Milet „Milet”, aby zbadać miejscowo drażniące i resorpcyjne na skórę działanie leku Tricid.

177. Wyniki pokazały, że trójpierścieniowy ma łagodny miejscowy efekt drażniący na błony śluzowe, nie ma miejscowego i resorpcyjnego działania po pojedynczym i wielokrotnym nakładaniu białych szczurów na skórę.

178. Kameneva M.V. (Doktorant VIEV) Ignatyev G.I. (Starszy naukowiec /%

179. NIIVSGE) Klochko R.T. (wiodący początkowy pracownik VNIIVSGE)

180. Podpisy pracowników VNIIVSGD „Ignatieva G.I. i Klochko R.T. Zapewniam cię: U / ^ 11. (<

181. Sekretarz naukowy VNIIVSGE ChshChDM ^) n-to-Gunenkova1. H. G. ■■■■ 11. L ‚1. Potwierdzam

182. Dyrektor Wszechrosyjskiego Instytutu Badań Doświadczalnej Medycyny Weterynaryjnej, akademik aG10 R ASHN1. G.F. Koromyslov

183. INSTRUKCJE TYMCZASOWE dotyczące stosowania leku TRIMICID w leczeniu grzybicy skóry zwierząt futerkowych, królików i kotów (w procedurze testu produkcyjnego) 1. PRZEPISY OGÓLNE

184. Trimicyd jest środkiem przeciwgrzybiczym, który obejmuje antybiotyk grisbofulwinę (10%), a także dimetylosulfotlenek, nowokainę i inne składniki pomocnicze jako substancję czynną.

185. Preparat jest jałową białą emulsją o lekkim specyficznym zapachu. Przy dłuższym przechowywaniu możliwe jest rozwarstwienie emulsji, znikanie po wstrząśnięciu i nie pogarszanie jakości leku.

186. Każde opakowanie jest opatrzone nazwą i przeznaczeniem leku, nazwą producenta, numerem serii eksperymentalnej, datą produkcji, okresem przechowywania i warunkami przechowywania.

187. Okres trwałości gwarancji leku wynosi 12 miesięcy od daty produkcji.2. WŁAŚCIWOŚCI BIOLOGICZNE

188. GrisYofulvin, który jest częścią środka antykoncepcyjnego, ma wyraźny efekt grzybobójczy na różne rodzaje dermatofitów, w tym rodzaj Tgorophylli i Myugovrogit.

189. Mechanizm działania antybiotyku polega na hamowaniu replikacji DNA i hamowaniu podziału komórkowego, co powoduje charakterystyczne zmiany morfologiczne strzępek (skręcanie, zwiększone rozgałęzianie).

190. Składniki pomocnicze w kompozycji tricydu poprawiają penetrację antybiotyku do komórek i zapewniają przedłużone działanie przeciwgrzybicze.

191. Lek jest wydalany z organizmu wraz z moczem i kałem, głównie w postaci produktów przemiany materii.

192. Trimicyd ma niską toksyczność dla zwierząt stałocieplnych; po podaniu pozajelitowym nie wykazuje miejscowego działania drażniącego i uczulającego..

193. PROCEDURA STOSOWANIA NARKOTYKU

194. Trimitsid jest przepisywany zwierzętom futerkowym, królikom i kotom z trichofitozą i mikrosporią, szczególnie w przypadkach, gdy szczepienie zwierząt jest przeciwwskazane (młode zwierzęta w wieku poniżej jednego miesiąca, tolerancja immunologiczna itp.).

195. Lek podaje się zwierzętom dwa do trzech razy w odstępie 5-7 dni.

196. W przypadku masowego traktowania zwierząt każdą partię środkaobójczego bada się wstępnie na niewielkiej liczbie zwierząt (10–15 zwierząt), które są monitorowane przez cały dzień. W przypadku braku powikłań lek stosuje się w całym inwentarzu żywym..

197. Zasadniczo nie ma żadnych skutków ubocznych i powikłań przy stosowaniu trymidów zgodnie z Tymczasowym Podręcznikiem. ŚRODKI OSTROŻNOŚCI

198. Wszelka praca z trymidami odbywa się przy użyciu odzieży ochronnej (szlafrok lub fartuch, gumowe kurtki).

199. Podczas pracy nie wolno palić, pić ani jeść jedzenia..

200. W przypadku przypadkowego kontaktu preparatu ze skórą lub błonami śluzowymi należy go natychmiast spłukać czystą „odą”.

201. Pod koniec pracy należy zdjąć kombinezon, umyć ręce ciepłą wodą i mydłem; umyć i osuszyć rękawiczki.

202. Zabrania się używania fiolek spod preparatu do innych celów; podlegają one neutralizacji poprzez gotowanie.

203. Tymczasowy podręcznik opracowany przez laboratorium mikologii i antybiotyków.

204. CAŁOROSYJSKI INSTYTUT BADAWCZY DLA DOŚWIADCZALNYCH WETERYNARIUSZY im. Y. R. KOVALENKO

205. TRIMICID Przepisy laboratoryjne dotyczące partii pilotażowych

206. ZATWIERDZAM ^ —Dyrektor VIEV „1 IDEMIC of RAAS1. F. Koromysłow

207. Obowiązkowi kierownicy i wykonawcy:

208. Głowa. Laboratorium Farmakologii i Chemioterapii, Prof. U ^ h ^ s ^ chi ^ LhV. Sidorov Kierownik laboratorium mikologii i antybiotyków, doktor nauk biologicznych 1. N.P. Golovin

209. Wykonawcy: doktor nauk ścisłych.

210. L. Kh. Galushko V.N., Candidate of Military Sciences / ^ Lbs ^ 7 L.A. Krasota Kierownik EPL, doktor nauk.

211. M. Amirbekov Student podyplomowy M.V. Kameneva 1. Moskwa 1998.

212. Te przepisy laboratoryjne dotyczą przedłużonej formy białej emulsji „TRIMICID”, która tworzy biały osad i klarowny supernatant podczas długotrwałego przechowywania.

213. Lek jest przeznaczony do leczenia dermatofitozy u kotów i zwierząt futerkowych. Wymagania techniczne.

214. Trimicyd musi spełniać wymagania niniejszego regulaminu laboratoryjnego.

215. Skład 100 ml preparatu Trimicide obejmuje następujące składniki: gryzeofulwina 10,0; nowokaina – 0,5; tween-80 – 8,0; dimetasulfotlenek – 45,0; 1,2 – glikol propylenowy – reszta.

216. W bezpośrednim kontakcie z lekiem może wystąpić podrażnienie błon śluzowych, możliwe jest alergiczne zapalenie skóry.

217. Pierwsza pomoc w przypadku kontaktu ze skórą lub oczami, natychmiast spłukać bieżącą wodą.

218. Środki zapobiegawcze: uszczelnianie sprzętu, ważenie leków w pudełku stołowym, ciągła praca ogólnej wentylacji.

219. Indywidualny sprzęt ochronny: w celu ochrony oczu w okularach oddechowych respirator MB-1 „Płatek” do ochrony rąk – rękawice; higiena osobista. 1. YG U

220. Instrukcja użytkowania. Trimitsid należy stosować ”zgodnie z tymczasowymi instrukcjami stosowania zalecanymi przez komisję metodologiczną i zatwierdzonymi przez dyrektora VIEV.

221. Warunki przechowywania tricydu. Trimitsid przechowywany w suchym ciemnym miejscu w temperaturze 4-8 ° C.

Należy pamiętać, że teksty naukowe przedstawione powyżej mają jedynie charakter poglądowy i są uzyskiwane poprzez uznanie oryginalnych tekstów dysertacji (OCR). W związku z tym mogą zawierać błędy związane z niedoskonałością algorytmów rozpoznawania. W dostarczanych przez nas plikach rozpraw i streszczeń PDF nie ma takich błędów.

Naukowa elektroniczna biblioteka disserCat – współczesna nauka Federacji Rosyjskiej, artykuły, badania rozprawy, literatura naukowa, teksty streszczeń rozprawy.

Dodaj komentarz