Czynnikiem sprawczym grzybicy skóry jest czynnik wywołujący rzęsistkowicę

przez | 2020-01-08

Spis treści:

Dezynfekcja obornika, ściółki i ścieków różnymi metodami

Kwestia usuwania i dezynfekcji obornika i ścieków w przemysłowej hodowli zwierząt jest nadal aktualna. Problem nabrał nie tylko znaczenia medycznego i weterynaryjnego, ekonomicznego, ale także środowiskowego.

Chore zwierzęta i mikronośniki, które nie mają wyraźnych oznak choroby, są niezwykle niebezpieczne, ponieważ drobnoustroje chorobotwórcze (patogeny) dostają się do środowiska.

Sposoby izolowania czynników wywołujących choroby zakaźne są różnorodne. Zależy to od charakteru choroby, jej patogenezy, a także od odpowiedniego rodzaju dotkniętych zwierząt. Istnieją choroby zakaźne, w których patogeny są wydalane głównie z kałem. Należą do nich: bruceloza, colibacteriosis, salmonelloza, paratuberculosis, zakaźna enterotoksemia owiec, czerwonka świń, biegunka wirusowa, dżuma bydła, wirusowe zapalenie żołądka i jelit świń, zaraza klasyczna i afrykańska, różyczka, botulizm, tężec, zarodki liściowe i martwica. ciało zwierzęcia może być wydalane z moczem, do obornika i ścieków: z brucelozą, leptospirozą, listeriozą, pryszczycą, chorobą Aujeszkyego, zarazą bydła, klasyczną plagą, różańcem świń itp..

Istnieje wiele chorób, w których patogen z ciała zwierzęcia jest uwalniany do środowiska zewnętrznego w inny sposób, na przykład przez płuca lub z wydzieliny z narządów płciowych, ale może również dostać się do obornika i ścieków. Choroby te obejmują: gruźlicę, pasterellozę, ospę, kampylobakteriozę.

W zależności od postaci i stadium choroby patogen z organizmu jest wydalany w różnych ilościach. Podczas manifestacji klinicznej, szczególnie w ostrym przebiegu, patogen jest stale iw dużych ilościach uwalniany do środowiska zewnętrznego. Jednak w wielu chorobach, w tym bardzo niebezpiecznych (wścieklizna, pomór świń, pryszczyca itp.) Patogen jest uwalniany już w okresie inkubacji przed pojawieniem się klinicznych objawów choroby, a także od zwierząt z rekonwalescencji na etapie zdrowienia, które po zniknięciu objawów klinicznych patogen może być nadal wydalany przez kilka miesięcy (pomór świń, choroba Aujeszkyego, salmonelloza itp.). Takie zwierzęta są mniej aktywne w rozprzestrzenianiu się patogenów, ale nie mniej niebezpieczne źródła czynnika wywołującego infekcję, ponieważ diagnoza jest trudna i trudna do zidentyfikowania..

Obornik od chorych zwierząt zawiera patogeny chorób zakaźnych i jest dla nich środowiskiem ochronnym przed narażeniem na niekorzystne czynniki, dlatego pozostają tam przez długi czas: wirus pryszczycy – 168 dni, brucella – 120 dni, patogen gruźlicy – ponad 7 miesięcy, zapalenie jelit paratuberculosis – do 11 miesięcy., Czynnik sprawczy różycy świni utrzymuje się w moczu do 203 dni, w kale – do 94 dni, wełny – do 194 dni, nekrobakteriozy w moczu – do 15 dni., W kale zwierząt – do 50 dni. Czynnik sprawczy grzybicy skóry (mikrospory, rzęsistkowica) zawarty w dotkniętych włosach zachowuje patogeniczność w oborniku przez ponad 8 miesięcy. Pod tym względem epizootyczna rola obornika jako czynnika przenoszenia w niektórych chorobach zakaźnych zwierząt pozostaje jednym z głównych problemów.

Dezynfekcja obornika i ścieków chroni środowisko, ludzi i zwierzęta przed patogenami.

W ramach dezynfekcji obornika ściółka odnosi się do niszczenia chorób zakaźnych (dezynfekcja) i inwazyjnych (inwazja).

Wybierając środki dezynfekujące, metody i sposoby dezynfekcji opierają się na epizootycznej sytuacji u zwierząt gospodarskich i skażenia obornika, ściółki niektórymi rodzajami patogenów, stopnia ich odporności i zagrożenia dla zwierząt i ludzi.

Wyboru środków, metod i reżimów dokonuje się w zależności od różnej struktury obornika, ściółki, stopnia rozcieńczenia wodą procesową.

W zależności od technologii utrzymywania zwierząt uzyskuje się obornik zawierający materiały ściółkowe, zwane obornikiem (wilgotność 68-85%), półpłynny (wilgotność 86-92%), płynny (wilgotność ponad 97%).

Usuwanie, przetwarzanie, przechowywanie, transport i wykorzystanie obornika, ściółki i ścieków odbywa się z uwzględnieniem wymagań ochrony środowiska przed zanieczyszczeniem i wyklucza rozprzestrzenianie się patogenów chorób zakaźnych i inwazyjnych, w tym społecznie niebezpiecznych (zoonozy).

Urządzenia do odkażania, przechowywania i przygotowania do wykorzystania obornika znajdują się poza ogrodzeniem ferm i ferm drobiu w odległości co najmniej 60 m od inwentarza żywego i 200 m od budynków dla drobiu. Odległości od miejsca przechowywania odchodów ściółkowych, kompostu i frakcji stałej do budynku inwentarskiego powinny wynosić co najmniej 15 m, a bloku mlecznego co najmniej 60 m.

Terytorium budynków jest ogrodzone ogrodzeniem o wysokości 1,5 m, chronione wieloletnim zalesieniem (pas ochronny o szerokości co najmniej 10 m), zagospodarowane, zagospodarowane, oświetlone, ustawione podjazdy i podjazd o szerokości 3,5 m.

Obornik z izolatorów i pomieszczeń kwarantanny jest zbierany i przechowywany w osobnych zbiornikach kwarantanny, które powinny być umieszczone na własnym dziedzińcu izolatora lub kwarantanny. Dezynfekcja, dezynsekcja, transport i usuwanie takiego obornika odbywa się zgodnie z obowiązującymi przepisami.

Aby wyjaśnić epizootyczną sytuację w gospodarstwach hodowlanych i drobiarskich, wszystkie rodzaje obornika i ściółki należy przechowywać przez co najmniej sześć dni. Czas trwania epizootycznego okresu wynosi do 45 dni od początku jego wystąpienia..

W przypadku kwarantanny obornika, frakcji stałej i ściółki buduje się sekcyjne magazyny z twardą powłoką, w celu kwarantanny innych rodzajów obornika i jego ciekłej frakcji – pojemniki typu sekcyjnego. Jeśli choroby zakaźne u zwierząt nie zostaną zarejestrowane w ciągu sześciu dni, obornik, ściółka i ścieki są transportowane w celu dalszego przetwarzania i wykorzystania.

W zależności od epizootii obornik i ściółkę dezynfekuje się na jeden z następujących sposobów: biologiczny (długie starzenie), chemiczny (amoniak lub formaldehyd) i fizyczny (obróbka cieplna lub spalanie).

Temat: Czynnik sprawczy leptospirozy

Cel lekcji: Zapoznanie studentów z zasadami przyjmowania pat. materiał, jego transfer do laboratorium oraz metodami badań bakteriologicznych i serologicznych w diagnostyce leptospirozy. Aby nauczyć techniki mikroskopii w ciemnym polu, metoda ustalania reakcji mikro- i makroaglutynacji.

Zadanie:

1. Aby przygotować lek ze zmiażdżoną kroplą z czystej kultury leptospira.

2. Widok pod mikroskopem w ciemnym polu mikroskopu.

3. Narysuj mikro zdjęcie.

4. Postawić reakcję mikroaglutynacji.

Materiały i wyposażenie: Probówki z czystą kulturą, leptospira, szkiełka i szkiełka nakrywkowe, czyste i beztłuszczowe, sterylne pipety Pasteura (jedno opakowanie), pipety wolumetryczne (sterylne, 1 ml 2 pipety), gumowe gruszki, alkohol, mikroskop z kondensatorem ciemnego pola i iluminatorem OI-17, probówka z wodą destylowaną (sterylną) – 5 ml, płytki z pleksiglasu z otworami (lub czyste rurki i stojaki na nie), leptyspirozowe surowice aglutynujące (dwie ampułki dwóch różnych serogrup, leptospira, probówka ze sterylnym roztworem soli fizjologicznej, antygeny diagnostyczne leptospiroza reakcja mikroaglutynacji). Do demonstracji potrzebne są tabele, probówki z kulturą leptosliru (na przykład L. biflexa), płytki Petriego z kulturą agarową z leptospira, dwa gotowe preparaty rozmazu (jeden z kultury leptospira barwionej metodą Romanovsky-Giemsa, drugi rozmaz przetworzony do mikroskopii luminescencyjnej). ML-2, niefluorescencyjny olej, produkty biologiczne.

Klasyfikacja:

Sekcja – 1, krętki;

Zamówienie – Spirochaetales (m / o, składający się z osiowego gwintu, wokół którego jest spiralny

skręcona cytoplazma. Mobile.);

Gatunek – L.interrogans, L.biflexa.

Wśród leptospiry wyróżnia się dwie grupy: patogenne dla zwierząt i ludzi (L. interrogans) i niepatogenne (L. biflexa). W patogennej leptospira wyróżniono 25 grup serologicznych i ponad 180 serowariantów (serowarów). Głównymi czynnikami wywołującymi leptospirozę są serogrupy leptospira Batavie, hebdomadis, dur brzuszny grypy, krwotok krwotoczny, kalafonia, pomona, tarassow. Leptospiroza –choroba zakaźna różnych gatunków zwierząt, osoba jest chora. Choroba charakteryzuje się krótkotrwałą gorączką, ostrym i podostrym przebiegiem choroby, często z hemoglobinurią (szczególnie u cieląt), niedokrwistością, żółtaczką, atonią przewodu pokarmowego i wyczerpaniem. Chore zwierzęta przez długi czas pozostają leptospiracetes i leptospiradelite. Należy pamiętać, że u krów i macior leptospiroza może objawiać się poronieniami..

Materiał patologiczny wysłane do laboratorium podczas życia zwierzęcia i pośmiertnie. Podczas życia zwierzęcia 5 ml krwi jest wysyłane do badania bakteriologicznego podczas gorączki i 5-10 ml do badania serologicznego, konieczne jest pobranie próbki krwi od poronionego zwierzęcia. Mocz jest zbierany do sterylnych pojemników podczas naturalnego oddawania moczu rano (przed karmieniem). Przerwany płód jest wysyłany jako całość lub jego żołądek z zawartością (obandażowaną po obu stronach), miąższowymi narządami płodu (oddzielnie od żołądka). Serce z zabandażowanymi naczyniami, kawałki narządów miąższowych, nerka, lepiej jako całość (jeśli kawałki, to spróbuj zachować warstwę korową), wysięk z klatki piersiowej i jamy brzusznej, pęcherz z zawartością (podwiązany), płyn mózgowo-rdzeniowy są wysyłane pośmiertnie od dużych zwierząt. Ciała małych zwierząt są wysyłane jako całość.

Oprócz materiału pochodzącego od chorych (i martwych) zwierząt, próbki wody (rzadko karmione, obornik) mogą być wysyłane do laboratorium na badania. Próbka wody o pojemności 1-2 litrów ze zbiornika.

W laboratorium przesłany materiał powinien zostać zbadany w ciągu 6 godzin od momentu pobrania próbki (lub śmierci zwierzęcia) i 10-12 godzin – w przypadku przechowywania w stanie schłodzonym, moczu – przez 3 godziny (tj. Czas przeżycia leptospira w tych warunkach). Leptospiroza jest diagnozowana metodami bakteriologicznymi, serologicznymi i histologicznymi..

Do badania bakteriologicznego materiał należy przygotować z wyprzedzeniem: odwirowuje się mocz (przy 10-15 tysiącach obrotów na minutę przez 30 minut) oraz bada osad i supernatant; krew (cytrynian) jest broniona, osocze jest badane; z próbek organów przygotowuje się zawiesinę w sterylnym roztworze soli fizjologicznej, badanym w stanie natywnym lub po odwirowaniu.

Mikroskopia. Leptospira źle postrzega kolor. Są one badane metodą zmiażdżonej kropli (co najmniej trzy pociągnięcia) za pomocą kondensatora ciemnego pola (soczewka x20, X40). Morfologicznie leptospira charakteryzuje się spiralnym kształtem, są to cienkie, wzniosłe, nitkowate organizmy w kształcie litery S, świecące w ciemnym polu; długość leptospira 5–20 μm, średnica 0,1–0,2 μm, końce wygięte w formie haczyków lub pogrubione w kształcie pałek. Ruch leptospiry może być translacyjny, rotacyjno-translacyjny i oscylacyjny. Leptospira nie ma wici; ich ruchliwość wynika z kurczenia się włókien włókna osiowego ciała idącego w przeciwnym kierunku niż bieguny komórki. Gram leptospira plami negatywnie, według Romanovsky’ego – Giemsa (z przedłużonym barwieniem po 48 godzinach) – w różowo-fioletowym kolorze. Rozważ te leki w konwencjonalnym skraplaczu z mikroskopem świetlnym (skraplacz Abbe). Do mikroskopii luminescencyjnej przygotowuje się preparaty rozmazowe z tego samego materiału, barwionego fluorescencyjną globuliną do diagnozy leptospirozy (aglutynujące globuliny surowicy leptospirozy oznaczone FITC). Zobacz leki w mikroskopie fluorescencyjnym.

Izolacja kultury Leptospira, dobra kultury. Materiał wysiewa się na specjalnych pożywkach – pożywce Lyubashchenko, Tersky (na zwykłych pożywkach nie rosną). Z każdej próbki 3-5 probówek wysiewa się pipetą Pasteura 3-5 kropli (5-6) z półpłynnym lub płynnym medium. Mocz do zaszczepienia i wydalania leptospiry stosuje się tylko z porannych porcji (przed karmieniem zwierząt).

Leptospira – fakultatywne drobnoustroje, hodowane w + 28-30 ° C przez 3 miesiące. Po 3, 5, 7, 10, a następnie co 5 dni przygotowuje się przygotowania do badań metodą zmiażdżonej kropli z zawartości wszystkich probówek, ogląda się je w ciemnym polu mikroskopu. Zwykle wzrost drobnoustrojów pojawia się w 3-5 dniu. W przypadku wykrycia leptospiry 0,5 ml, hodowle są hodowane w 3-5 probówkach z 5-10 ml świeżej pożywki, hodowane w temperaturze + 28-30 ° С. Po 4-7 dniach obserwuje się maksymalne gromadzenie się leptospiry w pożywce. Obecność wzrostu i czystość kultury określa się, obserwując lampy w wiązce światła z iluminatora (OI-19) i stosując mikroskopię.

Siewając materiał na pożywkach, hodowla leptospira nie zawsze jest możliwa do izolacji. Kurort do inscenizacji testy biologiczne. Zarażaj 20-30-dniowe złote chomiki i 10-20-letnie króliki (przyssawki). Badany materiał (krew, mocz, zawiesiny narządów miąższowych zwierząt, poronione płody itp.) Podaje się podskórnie lub dootrzewnowo: 0,3-0,5 ml chomikom i 2-3 ml królikom. W eksperymencie pobiera się dwa zwierzęta na test. W dniach 4-5 jedno zwierzę zostaje zabite; inny, jeśli nie zginie, jest w dniach 14-16. Zwierzęta są otwarte, krew jest badana w PMA z serogrupą leptospira (antygen) 13 (rozcieńczenie surowicy krwi zaczyna się od 1: 10). Dodatni PMA wskazuje na obecność leptospiry w badanym materiale. Ponadto, jeśli wyizolowano hodowlę i konieczne było określenie jej patogeniczności, zwierzętom wstrzyknięto dootrzewnowo 5-7-dniową hodowlę (70-100 leptospira w polu widzenia mikroskopu). Bardzo ceniona zjadliwa kultura, która w dawce 0,1 ml powoduje śmierć złotych chomików w dniach 5-12.

Izolowana czysta kultura jest badana w PMA w celu ustalenia powiązania antygenowego (serogrupy) z grupami aglutynujących surowic leptospirozy uprzednio rozcieńczonych sterylną solanką 1: 50, 1: 500, 1: 1000, 1: 2000, 1: 4000, 1: 16 000 i 1 : 32 000. Bioproduktory wytwarzają surowice w dwóch zestawach: pierwszy zestaw zawiera 15 surowic dla serogrup Leptospira, głównie grypy tyfusowej, pomara tarassi, krwotoku galopowego, batavie, hebdomadis i innych. Drugi zestaw to 20 surowic. Reakcję umieszcza się na płytkach z otworami (lub w probówkach), mieszając 0,1 ml surowicy z każdego rozcieńczenia z 0,1 ml izolowanej (typowanej) pełnej hodowli leptospira 5-7-10-C z akumulacją 70-100 ruchliwych komórek drobnoustrojów. Rozcieńczenia w surowicy są kolejno podwajane. Płytki (probówki) są przechowywane przez 1 godzinę w termostacie w temperaturze +37 ° C, a następnie zapisywane są wyniki – z każdego dołka (każde rozcieńczenie, surowica, zaczynając od największego) przygotowuje się preparaty z pokruszonymi kroplami, które są badane w ciemnym polu mikroskopu. w oparciu o obecność i charakter aglutynacji Leptospira: ++++ (cztery krzyże) – pełny 100% udział aglutynacji Leptospira – wiązanie leptospiry z tworzeniem klastrów w postaci „pająków” składających się z różnych ilości leptospiry (od kilku komórek do kilkudziesięciu sieci, a nawet setki), których wolne końce zachowują mobilność; +++ (trzy krzyże) – 75% aglutynacji leptospira; ++ (dwa krzyże) – 50% – + (jeden krzyż) – 25% aglutynacji; (-) minus

aglutynacja jest nieobecna. Dodatni RMA jest brany pod uwagę, jeśli jest wyrażony w czterech, trzech i dwóch krzyżykach. Kultura testowa należy do grupy serologicznej Leptospira, której surowica wywołuje reakcję na 2–4 ​​krzyżówki do 50–100% miana wskazanego na etykiecie.

Badanie bakteriologiczne wody przeprowadzone kilkoma metodami. Często stosuj następującą metodologię: próbkę wody o pojemności 500 ml odwirowuje się przy 10-15 tysiącach obrotów na minutę przez 30 minut. Osad w dawce 2-3 ml podaje się podskórnie dorosłym królikom, których krew uprzednio badano w PMA pod kątem obecności przeciwciał przeciwko antileptospira. Wyniki muszą być negatywne. Po 7, 14 i 20 dniach krew królików badano metodą PMA z grupami serologicznymi Leptospira 13. Pozytywne miano PMA wynoszące 1: 10 i więcej wskazuje na obecność patogennej leptospiry w tej próbce wody..

Diagnoza serologiczna leptospiroza jest przeprowadzana metodami PMA i RA (reakcja makroaglutynacji). Opracowano także metody CSC i dwustopniową wersję MFA (przeciwciała fluorescencyjne), które umożliwiają ustalenie obecności przeciwciał u pacjentów ze zwierzętami z leptospirozą. Krew (surowica) do badania należy pobrać w 5-7 dniu choroby i ponownie – po 7-10 dniach

Pytania bezpieczeństwa:

1. Czynnik sprawczy leptospirozy, jej morfologiczne, charakterystyczne cechy;

2. Zasady pobierania i przekazywania materiału patologicznego do celów mikrobiologicznych

3. Cechy uprawy leptospira;

4. Cechy badania mikroskopowego leptospira;

5. Metody diagnostyki serologicznej leptospirozy, identyfikacja serologiczna

6. Antygen do badań serologicznych, przygotowanie materiału na

Temat: Patogeny grzybic

Cel lekcji: Zapoznanie studentów z zasadami pobierania materiału patologicznego oraz metodami badań mikologicznych grzybicy skóry (rzęsistkowica, mikrosporia), kandydozy i grzybic pleśni.

Zadanie:

1. Przygotuj preparaty zmiażdżonych kropli z kultur grzybowych;

2. Zbadaj właściwości kulturowe patogenów.

Materiały i wyposażenie:Kultury grzybów (Trichophyton verrucosum, Microsporum canis, Candida albicans) na pożywce Saburo (lub innej), materiał patologiczny od zwierząt chorych na trichofytozę i mikrosporię, rozcinanie igieł, haczyków mikologicznych, szkiełek i szkiełek nakrywkowych, a także plakaty, stoły, produkty biologiczne.

Grzybice – grupa określonych chorób powodowanych przez patogenne mikroskopijne grzyby, które aktywnie pasożytują w ciele zwierzęcia.

Patogeny grzybicy skóry.Dermatomikozy obejmują grzybice, którym towarzyszy uszkodzenie skóry i jej pochodnych. Strefa pasożytnictwa patogenów jest ograniczona do tkanek, w których występuje keratyna. Dotyczy to zwierząt hodowlanych wszystkich typów (głównie młodych), zwierząt futerkowych i drapieżnych, a także ludzi. Czynniki wywołujące grzybicę skóry są klasyfikowane jako grzyby o wyższej niedoskonałości (klasa Deuteromycetes). Pomimo podobieństwa objawów klinicznych choroby (grzybicy) patogeny należą do różnych rodzajów – Trichofyton(powodując rzęsistkowicę),Microsporum(powodując microsporia) i Achorion(czynnik sprawczy parcha). Głównymi czynnikami wywołującymi rzęsistkowicę u bydła i owiec są Trichophyton verrucosum, Tr. Faviforme, a dla innych gatunków zwierząt – Tr. mentagrofity, Tr. Equinum Tr. galina, powodująca rzęsistkowicę u ptaków, ssaków, kurcząt i indyków, a także u myszy, szczurów, psów, kotów, zwierząt futerkowych.

Trichofytoza – Dermatomikoza, charakteryzująca się pojawieniem się łysych plam na skórze, głównie w głowie, wtedy zmiana może rozprzestrzenić się na powierzchnię ciała zwierzęcia. kruchy, kruchy w obszarze uszkodzenia włosów, naskórek jest odrzucany w postaci lepkich łusek.

Właściwości morfologiczne i kulturowe patogeny rzęsistkowicy ssaków. W miejscach uszkodzeń, jak można zauważyć w preparatach z materiału patologicznego, grzyb znajduje się na zewnątrz lub wewnątrz dotkniętych włosów w postaci regularnych rzędów przegrody z grzybnią. Podobnie w postaci łańcuchów są okrągłe lub owalne zarodniki, często tworzące osłonę u podstawy włosów. Na pożywkach patogeny trichofitozy mogą tworzyć artrospory, aleuria, chlamydospory, mikrokonidie i makrokonidie w kształcie wrzeciona, pojedyncze lub w wiązkach, zlokalizowane na końcach grzybni, czego nie obserwuje się, gdy grzyb jest pasożytowany na tkankach zwierzęcych.

Czynnik sprawczy włośnicy – aerob, dobrze rośnie na specjalnych pożywkach. Na agarze Saburo po 10–20 dniach inkubacji w termostacie w temperaturze + 26–28 ° C tworzy gładkie, skórzaste, pofałdowane, czasem z koloniami kwitnącymi w proszku, z których potężne głębokie gałęzie rozgałęziają się w podłożu.

Z trichofitozą ptaków (favus – biały grzebień, strup) choroba charakteryzuje się uszkodzeniem skóry, piór, narządów wewnętrznych. Na grzebieniu znajdują się catkins, bliżej dzioba, skorupy (łuski), które mają szaro-biały kolor. U kotów i psów forma źrenicy występuje na nogach, pazurach i głowie. W uogólnionej postaci głowa, opierzona część ciała, wole nosogardzieli, wpływa na cienki przekrój jelita.

Właściwości morfologiczne i kulturowe czynnik sprawczy włośnicy ptaków. Trichophyton gallinae często ma wygląd rozgałęzionych strzępek, które tworzą gęste skupiska w postaci filcu. Oddzielone strzępki grzybni, składające się z prostokątnych komórek z podwójną membraną. Zgnilizna grzybni tworzy okrągłe lub wieloaspektowe zarodniki znajdujące się w łańcuchach lub w oddzielnych skupiskach. Grzybnia w młodej kulturze jest cienka, w starej – gruba, wyraźnie podzielona na segmenty. Końce grzybni mogą mieć różne formacje: wrzecionowate, boczne spuchnięte, pogrubione ściany. Krawędzie i gałęzie na końcach mogą wyglądać jak poroże jelenia, przegrzebki. W preparacie znajdują się także chlamydospory, grzybnie z artrosporami i wielokomórkowe (5-8) makrokonidie. Na agarze Saburo T. gallinae po 4-5 dniach uprawy tworzy szarawe małe kolonie, które do 10-12 dnia osiągają rozmiar 10-12 mm. Kolonie mają żółtawo-biały kolor, różowy, czerwony lub malinowy, gładką i skórzastą powierzchnię. Później stają się woskowe z pomarszczoną powierzchnią (jak gąbka). Stare suche rośliny z powłoką proszkową, stają się szaro-białe.

Patogeny Microsporia (grzybicy)powodować choroby u psów, kotów, mięsożerców, rzadko małp, świnek morskich, owiec i innych zwierząt. Osoba jest również chora, dzieci są szczególnie wrażliwe. Rodzaj Microsporum obejmuje trzy gatunki Microsporum lanosum, M.equinum i M.gypseum.

Właściwości morfologiczne i kulturowe. W materiale patologicznym grzyby z rodzaju Microsporum mają wygląd rozgałęzionej grzybni, która po rozpadzie tworzy zaokrąglone zarodniki. Wokół dotkniętych włosów tworzy się osłona (sprzęgło) składająca się z zarodników o losowym układzie mozaiki. Na agarze Saburo z glukozą w temperaturze + 26–28 ° C. M. equinum rozwija się w dniach 6-7 dnia, tworząc skórzaste kolonie pokryte szaro-białą grzybnią powietrzną. Kolor dojrzałej kolonii jest żółty lub brązowy. Grzybnia jest septyczna. Utworzone mikrokonidia mają kształt gruszki, makrokonidia są wielokomórkowe. M. canis na agarze z brzeczki przez 3-4 dni tworzy szarawobiałe zaokrąglone kolonie o koncentrycznych okręgach z promienistym środkiem. Dojrzałe kolonie są żółte i brązowe. Utworzone mikrokonidia wyglądają jak komórki wielokamerowe. M. gypseum na agarze brzeczkowym tworzy płaskie mączne żółtawo-jasnobrązowe kolonie. Grzybnia w kształcie rakiety. Utworzone makrokonidia mają postać wielokomórkową. Grzyby Microsporum wytwarzają pigment fluorescencyjny (pterydynę).

Materiał patologiczny zeskrobania z dotkniętych części ciała zwierzęcia wraz ze skórkami i łuskami, dotknięte włosy z obszarów graniczących ze zdrową skórą.

Badania laboratoryjne obejmują mikroskopię, analizę luminescencji i izolację czystej kultury grzybowej. Badanie mikroskopowe jest głównym w diagnostyce laboratoryjnej grzybicy skóry. Częściej przygotowywane są niepomalowane (rodzime) preparaty. Materiał testowy umieszcza się na płytkach Petriego, miele nożyczkami i rozdziela skalpelem. Następnie kawałki włosów, łusek, skórki przenosi się na szkiełko, nakłada się kroplę 20% roztworu NaOH lub KOH i lekko ogrzewa nad płomieniem palnika. Następnie dodaj kroplę 50% wodnego roztworu glicerolu. Tak przygotowaną powłokę umieszczono na przygotowanym preparacie i oglądano najpierw pod małym wzrostem suchej soczewki (X8), a następnie pod dużym powiększeniem (X40) lub za pomocą układu zanurzeniowego. Wykrycie grzybni grzyba i różnych zarodników w materiale stanowi wystarczającą podstawę do rozpoznania grzybicy skóry.

W celu odróżnienia grzybów z rodzajów Trichopthyton i Misrosporum wziąć pod uwagę charakter lokalizacji zarodników we włosach dotkniętych chorobą (łańcuchy lub mozaikę) oraz wyniki analizy luminescencyjnej. W wątpliwych przypadkach identyfikuje się kulturę grzyba w celu potwierdzenia diagnozy..

Analiza luminescencyjna. Materiał testowy umieszcza się na płytkach Petriego i ogląda w świetle ultrafioletowym z lampy rtęciowo-kwarcowej typu PRK-2 lub PRK-4 z filtrem drewnianym w odległości 20 cm w zaciemnionym pomieszczeniu. Włosy dotknięte patogenem mikrosporii dają jasny zielonkawy blask pod wpływem promieni UV (patogeny włośniczkowe nie fluoryzują). Skorupy, łuski nie świecą. Ponadto luminescencja pozwala na wczesne rozpoznanie nietypowych i ukrytych form mikrosporii..

Izolacja czystej kultury. Robią uprawy z kultury grzyba na specjalnych pożywkach – Saburo, agar brzeczkowy, MPA z 2% glukozą, Capeca i kilka innych. Przed zaszczepieniem materiału na pożywkę czasami stosuje się 60% alkohol przez 5-7 minut, a następnie przemywa dwukrotnie wodą destylowaną i suszy w termostacie w temperaturze +37 ° C w celu uwolnienia go z towarzyszącej mikroflory lub do pożywki dodaje się antybiotyki. (penicylina, streptomycyna) w ilości 100-200 IU / ml pożywki. Uprawy inkubuje się w temperaturze + 26–28 ° C przez 20–30 dni. Badane są właściwości hodowlane i morfologiczne uprawianych kultur grzybowych..

Przyczyny infekcji grzybiczych pleśniąIstnieją różne rodzaje mikroskopijnych grzybów z rodzajów Aspergillus, Penicillium, Mucor itp..

Czynniki sprawcze aspergilozy są klasyfikowane jako wyższe niedoskonałe grzyby klasy Deuteromyces, rodzaj Aspergillus. Grzyby te są stałymi mieszkańcami ciała wielu zdrowych zwierząt. Naruszając warunki trzymania i karmienia zwierząt, prowadząc do zmniejszenia odporności organizmu, grzyby mogą powodować aspergilozę, a szczepy tworzące toksyny powodują aspergilotoksykozę.

Aspergiloza– niezakaźna choroba ptaków domowych i dzikich, rzadko ssaków (bydła, owiec, świń, kóz, koni, pszczół). Choroba charakteryzuje się ziarniniakowym uszkodzeniem układu oddechowego, głównie płuc. Materiał patologiczny to świeże zwłoki małych zwierząt, nakładki, guzki, dotknięte narządy lub ich części, jaja, skrawki ze zwłok.

Diagnozę laboratoryjną ustala się na podstawie badania mikroskopowego leków z materiału i izolacji czystej kultury patogenu. Do siewu stosuje się agar Chapek, Saburo, krew, mózg i agar kukurydziany, MPA (pH 5,5-6,5). Tkanka ziarnista jest spalana nad płomieniem, sterylne plastry są odcinane od środka i umieszczane na agarze na szalce Petriego 56, a wysięk wysiewa się do probówek z pożywką, inkubuje w temperaturze +25 i 37 ° С. W dniach 3-5, na gęstym podłożu, charakterystycznym dla kolonia aspergillus.

A. flavus, A. niger na agarze apapekowym tworzą szeroko rosnące kolonie z obfitą sporulacją. Kolor kolonii zależy od masy konidiów rozwijających się na konidioforach. Pod mikroskopem wykrywa się bezbarwną lub jasno zabarwioną grzybnię. Często powstają sklerocje sferyczne, reprezentowane przez komórki o grubych ściankach.

Czynniki sprawcze mucoromycosis– różni przedstawiciele rodzaju Mucor, należący do niższych, doskonałych grzybów klasy Oomycetes. Najczęstszym patogenem jest M.racemosus. Mucoromycosis (grzybica)– przewlekła choroba charakteryzująca się rozwojem ziarniniakowego procesu podobnego do gruźlicy w węzłach chłonnych i płucach, rzadziej w innych narządach i tkankach. Czynnik sprawczy mucoromycosis jest podatny na świnie, konie, bydło, owce, zwierzęta futerkowe; od zwierząt laboratoryjnych – świnek morskich, myszy. Opisano przypadki chorób ludzi. Materiałem do badań laboratoryjnych jest ropa, tkanka martwicza, wysięk, tkanka ziarniniakowa. Diagnozę przeprowadza się na podstawie mikroskopii materiału patologicznego i izolacji czystej kultury. Mikroskopia leków w pozytywnych przypadkach ujawnia nieseptyczną grzybnię. W dużych sporangiach rozwijające się zarodniki są widoczne na gifie zarodnikowym. Chlamydospory są charakterystyczne dla starszych upraw..

Aby podkreślić czystą kulturę patogenu kawałki tkanki ziarniniakowej są wystrzeliwane nad płomieniem palnika i sterylnie wycinane ze środka kawałków, które są układane na powierzchni podłoża Chapek (na płytkach Petriego) lub innych mediach. Uprawy inkubuje się w temperaturze + 25–30 ° С. Kultury grzybów rosną trzeciego dnia w postaci filcowanych poszarpanych szarawo-białych kolonii, w kolejnym kolorze mogą zmienić się na brązowy lub brązowy.

Mikroskopia preparaty przygotowane z materiału do badań nad grzybicami wywołanymi przez grzyby z rodzaju Aspergillus, Penicillium i Misog są przeprowadzane w dwóch etapach.

Kolonie bada się pod mikroskopem (X200-300) w miejscu ich wzrostu (na płytkach Petriego). W tym przypadku bierze się pod uwagę lokalizację konidioforów i zarodników, obecność lub brak grzybni powietrznej, ogólną strukturę aparatu konidioforowego. Zbadaj pod mikroskopem elementy grzyba w leku „zmiażdżona kropla”.

Czynniki sprawcze kandydozy– mikroskopijne grzyby w kształcie drożdży z rodzaju Candida, wśród których na szczególną uwagę zasługuje Candida albicans, który należy do najwyższych grzybów niedoskonałych. Grzyby tego rodzaju, opcjonalne pasożyty, które stale żyją na błonach śluzowych zwierząt, powodują chorobę zwierząt – kandydozę (kandydoza, monilioza, pleśniawka itp.), Charakteryzującą się uszkodzeniem błon śluzowych przewodu pokarmowego oraz różnych narządów i tkanek. C. albicans atakuje głównie ptaki, a także kurczęta, gęsi, kaczki, perliczki, indyki, gołębie, bażanty itp. Choroba jest poważniejsza u młodych zwierząt. Prosięta, cielęta, jagnięta, szczenięta rzadziej chorują. Pojawienie się kandydamikozy przyczynia się do zmniejszenia odporności organizmu zwierzęcego. Kandydoza może być pierwotna i wtórna (na tle antybiotykoterapii). Aby przeniknąć grzyb do ciała zwierzęcia, konieczny jest uraz błon śluzowych.

Pat. materiałem do badań są skrawki z błony śluzowej jamy ustnej, przełyku, wole, płytce nazębnej, nakładce, mleku od krów z zapaleniem sutka itp. Diagnozę przeprowadza się na podstawie mikroskopii i izolacji czystej kultury patogenu.

Mikroskopia materiału przeprowadzana jest w niepomalowanym i wybarwionym preparacie Gram, Tsil – Nielsen, Romanovsky-Giemsa. W niepomalowanych rozmazach grzyby są reprezentowane przez bezbarwne włókna pseudomycelia z przegrodami, składającymi się z 2-4 wydłużonych pączkujących komórek lub gęsto splecionej grzybni septycznej. Istnieje również wiele owalnych, pączkujących i nie pączkujących cienkościennych komórek drożdży – blastospory, które są fioletowe, niebieskie lub różowe z drobnoziarnistymi inkluzjami.

Aby uzyskać czystą kulturę materiał patologiczny jest umieszczany na podłożu agarowym: agar Saburo, agar brzeczkowy, MPA z 2% glukozą itp. Ponieważ badany materiał jest zanieczyszczony mikroflorą bakteryjną, należy go potraktować 0,5% roztworem fenolu, do pożywki dodaje się penicylinę i streptomycynę. Uprawy inkubuje się w temperaturze + 25-30 ° С. Pierwotne kolonie rosną w dniach 2–3 dnia. W celu różnicowania hodowane kolonie grzybów są ponownie hodowane na różnych stałych pożywkach (agar brzeczkowy, Saburo, agar kukurydziany, 5% agar we krwi) i na płynne podłoża zawierające 1% pepton, 1% odczynnik Andrade, 2% glukoza, sacharoza bez laktozy. PH pożywki wynosi 2,5-3,0. Na podłożach stałych grzyby z rodzaju Candida tworzą formy S i R. Mikroskopia kolonii w kształcie litery S ujawnia owalne, czasem pączkujące komórki, a wydłużone komórki pseudomycelii można znaleźć w koloniach w kształcie litery R. C. albicans tworzy pierścień ścienny i osad w płynnych pożywkach, a chlamydospory i blastospory na agarze kukurydzianym.

Pytania bezpieczeństwa:

1. Charakterystyczne cechy różnych rodzajów grzybni skóry.

2. Materiał patologiczny do badań nad grzybicą skóry.

3. Morfologiczne i kulturowe cechy patogenów grzybicy skóry.

4. Mikroskopia luminescencyjna w przypadku grzybicy skóry.

5. Patogeny kandydozy, aspergiloza, ich uprawa.

6. Patogenne właściwości grzybów z rodzaju Candida.

Dodaj komentarz